Вирусвакцина против классической чумы свиней для перорального применения

Использование: ветеринарная вирусология. Сущность изобретения: вакцина против классической чумы свиней для пероральной иммунизации содержит (в вес. %) вирусную суспензию штамма ЛК ВНИИВВиМ с активностью 10 4,0-4,5 БОЕ 50 мл -1 8-10, раствор пептона и раствор сахарозы 8-10, смолу КБ-4П-2 70-75, аэросил АМ 1-300 - остальное. 3 табл.

Изобретение относится области ветеринарной вирусологии, а именно к вакцине против классической чумы, предназначенной для пероральной иммунизации диких и домашних свиней.

Для получения сухих гранулированных фармакологических препаратов используется простой и производительный метод контактного обезвоживания, заключающийся в смешивании фармацевтических суспензий или растворов с дегидратантом, в частности со смолой КБ-ЧП-2 (пат. США N 4221778, 1980).

Однако этот метод непригоден для получения сухих пероральных вакцин, так как не обеспечивает необходимых физико-химических свойств готового продукта.

Известна вакцина против классической чумы свиней из штамма "К", предназначенная для пероральной иммунизации, которую получают лиофилизацией вирус-крови зайца, а перед иммунизацией заделывают ее в корнеплоды или хлеб (авт. св. НРБ N 36374, 1984). Недостаток этой вакцины заключается в необходимости ее лиофилизации, последующей дозировке и приготовлении специальных приманок. Кроме того, в корнеплодах и хлебе срок хранения вакцины без существенных потерь активности не превышает 3 суток.

Известна также вакцина против классической чумы свиней, штамм "Гудзон", получаемая лиофилизацией вируссодержащей суспензии клеток почки эмбриона свиньи. После двукратного (в дозе 1,6х10 5 НМД 50) с интервалом в 7 суток применения вакцина эффективна при пероральной иммунизации диких свиней (Тезисы докладов международного симпозиума "Проблемы патологии и охраны здоровья диких животных, экологическое взаимодействие болезней диких и сельскохозяйственных животных". Астрахань, 5-9 октября 1992 г. с. 19-21). Недостаток этой вакцины заключается в том, что для достижения положительного эффекта необходима двукратная вакцинация свиней, а для приготовления вакцины требуется сложное сушильное оборудование.

Целью изобретения является создание вакцины против классической чумы свиней для пероральной иммунизации, эффективной при однократном применении и получаемой контактным обезвоживанием.

В табл. 1 приведена биологическая активность сухой вакцины в зависимости от процентного соотношения компонентов. Титр вируса в исходной суспензии составляет 5,0 lg БОЕ 50 мин -1 . Из табл. 1 видно, что биологическая активность вакцины зависит от количественного соотношения компонентов. При содержании в вакцине вирусной суспензии в количестве 10, 15 и 30% биологическая активность вакцины составляет 1,5-1,75 lg БОЕ 50 х г -1 . Увеличение активности вакцины отмечают при содержании вирусной суспензии 19-20% Наиболее приемлемым является следующий процентный состав вакцины, вирусная суспензия 19-20 аэросил АМ 1-300 6-10 смола КБ-ЧП-2 70-75 В табл. 2 представлены данные, полученные после однократной иммунизации свиней сухой вакциной с активностью 2,8 lg БОЕ 50 х г -1 . Поросят массой 22-25 кг вакцинируют перорально, смешивая сухую вакцину с комбикормом (300-500 г). Уровень антител в крови привитых поросят определяют в реакции нейтрализации.

Данные табл. 2 показывают, что у всех однократно иммунизированных животных на 29 сутки после иммунизации отмечают высокий (1:8 1:128) уровень вируснейтрализующих антител. После контрольного заражения свиней (на 29 сутки после иммунизации) вирулентным вирусом КЧС, штамм "Ши-Мынь" в дозе 10 4 ЛД 50 все вакцинированные поросята остаются клинически здоровыми в течение 21 суток (срок наблюдения). Контрольный поросенок пал на 7 сутки после заражения с клиническими признаками КЧС.

В табл. 3 приведены результаты серологических исследований поросят, иммунизированных перорально дважды с интервалом в 3 суток. Из данных табл. 3 видно, что на 24 сутки после вакцинации титр антител у всех вакцинированных животных составлял 1:8 1:16. Через 50 суток после вакцинации поросят заражали вирулентным вирусом КЧС, штамм "Ши-Мынь" в дозе 10 4 ЛД 50. В течение 21 суток (срок наблюдения) все поросята оставались клинически здоровыми.

Таким образом, вакцина против классической чумы свиней, состоящая на 19-20% из сухой вирусной суспензии, на 70-75% из смолы КБ-ЧП-2 и на 6-10% азросила АМ 1-300, создает у 100% животных иммунитет против классической чумы свиней при однократной (в дозе 1,3 х 10 4 БОЕ 50) и двукратной (в дозе 4х10 4 БОЕ 50) пероральной иммунизации.

Предлагаемая вакцина против классической чумы свиней для пероральной иммунизации эффективна при однократном применении, для ее приготовления не требуется специальное сушильное оборудование, а технология ее промышленной наработки не вызывает затруднений, т.к. существуют технологические линии для приготовления вакцин контактным обезвоживанием.

Вакцина против классической чумы свиней для пероральной иммунизации, включающая сухую вирусную суспензию со стабилизирующими добавками, отличающаяся тем, что вакцина дополнительно содержит смолу КБ-4П-2 и аэросил АМ 1-300, из вирусной суспензии содержит суспензию штамма ЛК ВНИИВВиМ, а из стабилизирующих добавок раствор пептона и сахарозы при следующих соотношениях, об.

Вирусная суспензия штамма ЛК ВНИИВВиМ с активностью 10 4,0-4,5 БОЕ 50 мл -1 8 10
Cтабилизирующие добавки 8 10
Cмола КБ-4П-2 70 75
Аэросил АМ 1-300 Остальное

классическая чума свиней

вакцина против классической чумы свиней, для перорального применения, живая Брикет-приманка

Ваше сообщение отправлено

Состав

Одна доза вакцины содержит:

2 мл вакцинного штамма ЛК-М вируса классической чумы свиней с титром

≥ 4,0 lg ТКИД50/мл в полимерном блистере;

брикет-приманку из пищевых и аттрактивных компонентов;

антибиотик тетрациклинового ряда (биологический маркер) не менее 0,150 г/приманку.

Форма выпуска

Брикет-приманка, в которую помещен полимерный блистер с культуральной вируссодержащей жидкостью.

иммунобиологические свойства

При поедании приманки животное раскусывает полимерный блистер с культуральной вируссодержащей жидкостью, высвобождая вирус в ротовую полость. Через слизистые оболочки и миндалины, вирус попадает в организм и стимулирует выработку защитных вируснейтрализующих антител к КЧС. Защитный эффект от применения вакцины наблюдается только у неинфицированных животных.

Поствакцинальная защита у свиней наступает на 10-14 сутки после вакцинации и длится не менее года.

целевые животные

Дикие и домашние свиньи всех возрастных групп.

Показания к применению

Оральная иммунизация диких и домашних свиней против классической чумы свиней.

Для проведения профилактической вакцинации домашних свиней против КЧС в первую очередь рекомендуется применение парентерального метода вакцинации.

Взаимодействие с другими лекарственными средствами

Особые указания (в период супоросности, лактации)

Вакцина не оказывает негативного влияния в период супоросности и лактации.

Способ применения и дозы

Дикие свиньи

Кампании по вакцинации свиней проводятся дважды в год - весной и осенью. В период одной кампании раскладку вакцины на одной территории проводят двукратно с интервалом 3-4 недели, с целью охвата большего процента поголовья свиней, в том числе молодняка.

Рекомендованные схемы вакцинации могут применяться как каждая отдельно, так и в комплексе:

• I схема вакцинации. На одно место кормления (кормовой площадки) определение количества доз вакцины на одну раскладку проводят из расчета 2-3 приманки на одну свинью, которая его посещает. Параллельно с проведением раскладки рассчитанного количества приманок с вакциной, создают не менее 3-х контрольных точек с метками, которые не отпугивают животных, в разных точках одного места кормления (по 1-2 приманки в каждой точке). Контроль потребления приманок с вакциной в контрольных точках проводят на 7 или 8-й и 14 или 15-й дни.

• II схема вакцинации. В зоне миграции диких свиней и недоступных местах вакцину распределяют при помощи малой авиации. Приманки с вакциной распределяют через каждые 20-30 м по миграционным линиям (тропам).

• III схема вакцинации. В зонах сезонной концентрации животных возможна раскладка по параллельным линиям полета с расстоянием между ними не менее 200-250 м. Предварительно необходимо определить территорию и количество животных на ней. Вакцину раскладывают с плотностью 15-30 доз на км2, учитывая таксацию животных. Возможно применение большего количества доз вакцины в зависимости от плотности популяции животных.

• IV схема вакцинации. Допускается автомобильная и ручная раскладка вакцинных приманок, например, четыре человека, проходя 1 км на расстоянии между собой 250 метров, раскладывают вакцину с интервалом 200 метров. Распределение вручную – это система, которой отдается предпочтение в пригородных зонах в комбинации с воздушным распределением при первой возможности.

Схемы вакцинации (количество доз вакцины и раскладка) диких свиней могут быть скорректированы ветеринарным врачом в соответствии с эпизоотической ситуацией в регионе и плотностью популяции животых.

Домашние свиньи

(см. пункт Показания к применению):

Вакцинацию проводят дважды с интервалом в 3-4 недели. После 12-часовой голодной диеты каждое животное должно получить одну дозу вакцины. Если возникли сомнения в действительности поедания брикет-приманки с вакциной, то процедуру проводят повторно на следующий день.

В благополучных по классической чуме свиней хозяйствах взрослых свиней и ремонтный молодняк с трехмесячного возраста вакцинируют один раз в год, свиноматок -– один раз в год за 45-15 суток до осеменения.

В хозяйствах, где существует угроза инфицирования, поросят вакцинируют двукратно: первый раз в возрасте 30-45 дней; повторно через 3-4 недели; в дальнейшем – один раз в год.

Период выведения (каренции)

Срок годности вакцины

24 месяца при температуре не выше минус 18° С.

Условия хранения

Хранить в сухом, темном, недоступном для детей месте при температуре не выше минус 18° С.

биологические науки

• Калмыкова Екатерина Михайловна , студент
• Башкирский государственный аграрный университет

• ЭПИЗООТИЯ
• КЛАССИЧЕСКАЯ ЧУМА СВИНЕЙ
• ЭКОНОМИЧЕСКАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ
• ПРОФИЛАКТИКА

Похожие материалы

На сегодняшний день свиноводству отводится большая роль в развитии мясного животноводства в стране, так как именно для свиней характерны скороспелость, многоплодие и высокий выход продуктов убоя. Важен и другой аспект: мясосальная свинина - незаменимый компонент колбасных изделий при традиционно стабильном спросе на нее населения Российской Федерации.

Решить задачи по совершенствованию и интенсификации мясного животноводства не возможно без использования в производственных процессах здоровых животных, а увеличение экспорта отечественной продукции невозможно без поддержания эпизоотического благополучия территории Российской Федерации и производства безопасной в ветеринарно-санитарном отношении продукции животноводства. Только своевременное и качественное решение вопросов, стоящих перед ветеринарией, обеспечит ускоренное развитие животноводства.

В настоящее время наряду с нарастанием животноводческих отраслей, совершенствованием технологических процессов и организации труда, качественное проведение ветеринарных мероприятий становится одним из важных факторов увеличения производства продуктов свиноводства. Вовремя проведенные ветеринарные мероприятия позволяют уменьшить заболеваемость, падёж животных, а также повысить их продуктивность, улучшить качество продуктов и сырья животного происхождения. Необходимо учитывать так же то, что снижение уровня заболеваемости животных имеет не только экономическое, но и важное социальное значение. Профилактика инфекционных и инвазионных заболеваний позволяет поддерживать и развивать важные межхозяйственные, межрегиональные и межгосударственные связи, а успешная борьба с антропозоонозами обеспечивает охрану здоровья населения России.

Классическая чума свиней (КЧС) – высококонтагиозная вирусная болезнь, сопровождающееся повышением температуры тела, геморрагическим диатезом, некротическими изменениями пищеварительного тракта, высокой смертностью. Клинически выздоровевшие животные остаются носителями вируса. Больные животные отстают в росте и развитии). Болеют неимунные домашние и дикие свиньи независимо от возраста и породы. Согласно классификации Международного эпизоотического Бюро KЧС входит в перечень карантинных болезней, подлежащих обязательной регистрации и оповещению.

Для профилактики классической чумы свиней применяют в основном живые вакцины, так как инактивированные препараты менее иммуногенны и значительно дороже. В нашей стране живые вакцины готовят из аттенуированных штаммовК и ЛК-ВНИИВВиМ вируса КЧС, репродуцируемых в первичных культурах клеток почки поросят или тестикулов ягнят. При обнаружении больных классической чумой свиней, хозяйство карантинируют, вводят ряд ограничений, проводят оздоровительные мероприятия. Рекомендовано уничтожение всего свинопоголовья в небольших, частных хозяйствах. Убой проводят на санитарной бойне или на общем конвейере мясокомбината в отдельную смену. Внутренние органы, кровь, конфискаты уничтожают. Мясо используют для приготовления вареных и варено-копченых изделий. Трупы уничтожают сжиганием.

Больных и подозрительных по заболеванию животных убивают, а всех остальных свиней вакцинируют против чумы. Одновременно проводят текущую дезинфекцию свинарников 2-3%-ным горячим раствором едкого натра, 2%-ным раствором формальдегида, 20%-ной взвесью свежегашеной извести. Навоз обеззараживают биотермически. Малоценный инвентарь сжигают.

Карантин с хозяйства снимают через 30 дней после последнего случая падежа или убоя больных свиней, проведения всех мероприятий по обеззараживанию объектов внешней среды и вакцинации оставшегося свинопоголовья. Запрещается вывозить свиней в другие хозяйства в течение 12 мес. После снятия карантина. В том случае, если в хозяйстве (на ферме) было убито все имевшееся поголовье, то карантин снимают сразу после проведения необходимых ветеринарно-санитарных мероприятий и заключительной дезинфекции.

Деятельность ветеринарной службы направлена на всемерное повышение эффективности животноводства. В связи с этим экономический анализ эффективности ветеринарных мероприятий имеет важное значение, так как позволяет сократить потери от заболеваемости и падежа животных, снижения продуктивности и качества продукции. Поэтому определение экономической эффективности от применения ветеринарных мероприятий в мясном свиноводстве представляет научный и практический интерес, что и обусловило выбор темы исследования[3].

Ущерб предотвращенный в результате профилактики болезни (Пу1) в хозяйстве, определяли по разнице между потенциальным и фактическим экономическим ущербом по формуле:

Пу1 = Мо * Кз1 * Ц – У,

Где Мо – общее поголовье животных;

Кз1 – коэффициент заболеваемости в неблагополучных стадах;

Ц - закупочная цена единицы продукции (руб.),

У – фактический экономический ущерб.

Пу1= 1200* 0,8*120 – 0= 115200руб.

Экономический эффект, получаемый в результате проведения профилактических и оздоровительных, мероприятий определяли по формуле:

где Пу1 – ущерб, предотвращенный в результате проведения ветеринарных мероприятий, в рублях; Зв – стоимость вакцины, израсходованной на вакцинацию свиней.

где Зв – общая сумма затрат на ветеринарные мероприятия; З1 – стоимость вакцины, медикаментов, материалов; З2 – зарплата ветеринарного врача; З3 – оплата труда подсобных рабочих.

Согласно инструкции по применению вирусвакцины ЛК-ВНИИВВиМ против классической чумы свиней культуральной сухой ее нужно развести в стерильном физиологическом растворе, исходя из расчета 2,0см3 на 1 дозу. Для разведения 1200 доз потребуется 2400см3. Стоимость 450 мл физиологического раствора равна 125рублей, тогда стоимость 2400мл физраствора равна 2400мл*125руб./450мл=666,7руб.

Для обработки места инъекций использовали 70%-ный этиловый спирт. На 1 голову согласно нормам расходуется 0,5мл спирта, на 1200голов понадобилось 600мл. стоимость 100мл спирта – 32,5руб., 600 мл -195 руб. На обработку 1200 голов ушло 100г ваты стоимостью 39руб.

Оклад ветеринарного врача составляет 24 000 руб., а 1 час работы 24000руб/ 8ч*21день = 143руб/ч.

Зв =2616 +666,7 +195+39=3 516,7руб.

На ревакцинацию затратили такое же количество средств. Поэтому общая сумма затрат на вакцинацию и ревакцинацию составила 3516,7*2=7033,4 руб

Эв = 115 200 – 7033,4 =108 166,6 руб

Экономическая эффективность ветеринарных мероприятий на 1 рубль затрат определялся по формуле:

Эф = 108166,6/ 7033,4 = 15,38

Экономическая эффективность на 1 рубль затрат труда ветеринарных специалистов составила 15,38 рублей.

Таким образом, проведение профилактических мероприятий путем вакцинации экономически обосновано. Кроме того, по результатам мониторинга за последние 3 года случаев заболевания КЧС после вакцинации не было.

Список литературы

Электронное периодическое издание зарегистрировано в Федеральной службе по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор), свидетельство о регистрации СМИ — ЭЛ № ФС77-41429 от 23.07.2010 г.

Соучредители СМИ: Долганов А.А., Майоров Е.В.

Классическая чума свиней (КЧС, чума свиней) — высококонтагиозная вирусная болезнь, характеризующаяся лихорадкой, поражением кровеносной и кроветворной систем, крупозным воспалением легких и крупозно-дифтеритическим воспалением толстого кишечника.

Первые описания болезни относятся к 1810 г. в Северной Америке, к 1822 г. во Франции, к 1833 г. в Германии. Позже ее регистрировали в Южной Америке и Южной Африке. В настоящее время она встречается повсеместно, за исключением США, Канады, Австралии, Исландии, Новой Зеландии, Норвегии, Швеции. Вирусную природу КЧС установили Швейниц и Дорсет в 1903 г.

Характеристика возбудителя. Вирус классической чумы свиней (ВКЧС) — PHK-содержащий; относится к семейству Flaviviridae, роду Pestivirus. Геном вируса — односпиральная РНК положительной полярности. Он кодирует четыре структурных белка (три гликопротеина — VP1, VP2, VP3 и один капсидный белок — СР) и 3—7 неструктурных белков. Вирионы вируса диаметром 40—60 нм, с суперкапсидной оболочкой. Диаметр нуклеокапсида вириона 29 нм.

Устойчивость к физико-химическим воздействиям. В сыворотке крови больных животных вирус сохраняет активность при температуре 38 °С до 18—20 сут. Кипячение инактивирует его моментально. На стенах свинарников, на полях вирус остается вирулентным в течение года, а в свиных тушах при температуре минус 20—25°С — до 6 мес. Лучшие дезинфицирующие средства для него — 2%-ный раствор NaOH, раствор хлорной извести 1 : 20 и 3—6%-ное крезоловое масло.

Антигенная вариабельность. По вирулентности различают А-, В-, С-варианты вируса. К варианту А относят вирулентные эпизоотические штаммы, вызывающие у свиней всех возрастов остропротекающую болезнь. Вирусы варианта В вирулентны только для поросят, и при циркуляции в стаде вызывают атипичную или хроническую чуму. К варианту С относится американский слабовирулентный штамм.

Антигенная вариабельность вируса не установлена. В то же время имеется антигенное различие среди штаммов ВКЧС. Установлено одностороннее родство между вирусами КЧС и диареи крупного рогатого скота: антитела к вирусу диареи нейтрализуют ВКЧС, но антитела к вирусу КЧС не нейтрализуют вирус диареи.

Антигенная активность. В сыворотке свиней-реконвалесцентов обнаруживают вируснейтрализующие и комплементсвязывающие антитела. Вируснейтрализующие антитела достигают максимума через 3—4 нед после инфицирования или иммунизации и сохраняются более года.

Культивирование вируса. В лаборатории его можно довольно легко проводить на неимунных свиньях. Однако это дорого и небезопасно. Лабораторные животные к ВКЧС невосприимчивы. В то же время возможна адаптация вируса к организму кролика.

ВКЧС удается репродуцировать в первичной культуре клеток легких, селезенки, почки, тестикул и лейкоцитов свиней, однако без выраженного ЦПД. В перевиваемой линии клеток почки поросенка (РК-15) размножение вируса сопровождается проявлением ЦПД. Для репродукции вируса оптимальной является температура 39 °С. В случае отсутствия ЦПД инфекционная активность вируса может быть определена с помощью РИФ методом флуоресцирующих бляшек, учета негативных колоний под агаровым покрытием, с помощью феномена экзальтации вируса ньюкаслской болезни. Для промышленного выращивания вируса может быть использована перевиваемая линия клеток почки эмбриона кролика (ПЭКр).

Гемагглютинирующие и гемадсорбирующие свойства. У ВКЧС они не установлены.

Клинические признаки. Инкубационный период в зависимости от вирулентности вируса и резистентности животного длится 3—9, иногда до 20 дней. Болезнь может протекать сверхостро, остро, подостро и хронически.

Сверхострое течение болезни наблюдают редко и у молодых животных. Оно характеризуется повышением температуры тела до 41—42°С, угнетением, отсутствием аппетита и рвотой, появлением ярко-красных пятен на коже. Гибель наступает через 1 —2 дня.

Острое течение помимо наблюдаемых при сверхостром течении неспецифических признаков болезни сопровождается запором, затем поносом, а также слизисто-гнойным ринитом. На коже живота, внутренней поверхности бедер, шеи и в основании ушных раковин появляются пустулы, заполненные желтоватым экссудатом. Позже на коже можно видеть точечные кровоизлияния, сливающиеся затем в темно-багровые пятна и не исчезающие при надавливании. Дыхание затрудненное, учащенное; в результате сердечной недостаточности пятачок, ушные раковины, кожа живота и конечностей приобретает синюшную окраску. Развивается лейкопения. Больные животные погибают на 7—10-й день.

При остром течении болезни нередко наблюдают нервную форму с судорожными сокращениями групп мышц, манежными движениями, параличами задних конечностей, нервным возбуждением и гибелью через 1—2 дня.

Подострое течение нередко бывает после острого переболевания. При этом болезнь длится до трех недель, иногда животные выздоравливают. Состояние свиней отягощается наслоением вторичных бактериальных инфекций: сальмонеллеза и пастереллеза. В случае осложнения чумы сальмонеллезом вторичные поражения наблюдают в желудочно-кишечном тракте (кишечная форма чумы). Запор сменяется поносом. Животные худеют и гибнут.

Осложнение чумы пастереллезом ведет к развитию легочной формы чумы, сопровождаемой кашлем, признаками бронхопневмонии и заканчивающейся, как правило, гибелью животного.

Хроническое течение болезни наблюдается в течение нескольких месяцев. Проявляется оно тяжелым крупозно-дифтероидным поражением желудочно-кишечного тракта, гнойно-фибринозным воспалением легких и плевритом. Поносы сменяются запорами, прогрессирует исхудание. Температура тела повышена. Осложнение вторичными инфекциями (сальмонеллезом и пастереллезом) ведет к обострению болезни и гибели животного. Возможны аборты, мертворождаемость. Плоды заражаются через плаценту, и у поросят развивается хронически протекающая болезнь с гибелью в возрасте 1—2 мес.

Причина хронического течения чумы — размножение вирулентных штаммов в недостаточно иммунном организме, при использовании инактивированных вакцин.

Латентное течение наблюдают при внутриутробном заражении. У поросят отмечаются угнетение, конъюнктивиты, дерматиты, двигательные нарушения. Гибель наступает через 2—11 мес. На вскрытии отмечают увеличение лимфоузлов и атрофию тимуса. КЧС передается алиментарно, аэрогенно, трансмиссивно (комарами). Мертворождаемость, отставание в росте свидетельствуют о внутриутробном заражении плодов и установлении у них персистентной виремии.

Воротами инфекции чаще являются миндалины и носоглотка. В их лимфоидно-ретикулярной ткани происходят первичная локализация и размножение вируса. Через 16—24 ч вирус проникает в регионарные лимфатические узлы.

Для вируса характерна пантропность, однако он преимущественно репродуцируется и накапливается в органах, богатых лимфоидно-ретикулярными клетками (селезенка, лимфатические узлы, костный мозг, пейеровы бляшки слизистой кишечника, эндотелий кровеносных сосудов). В местах размножения вируса происходят дистрофические и некротические изменения. Патологический процесс в стенках кровеносных сосудов микроциркуляторного русла значительно повышает их проницаемость и приводит к возникновению кровоизлияний, отеков, некродистрофических и воспалительных процессов в различных тканях и органах. Появление геморрагий связывают также с нарушениями в системе свертывания крови.

В результате поражения кроветворных органов развиваются анемия и лейкопения (2500—3000 лейкоцитов/мм 3 ), угнетение опсоно-фагоцитарной реакции и резкое снижение бактерицидности сыворотки крови. Разрушение клеток иммунной системы в результате размножения в них вируса и повышения литической активности макрофагов снижает уровень иммунитета.

Ослабленный организм не может противостоять секундарной бактериальной микрофлоре. Развивается вторичная инфекция, которая отягощает состояние организма.

Воспалительные процессы в мозговой ткани сопровождаются появлением в ней периваскулярных инфильтратов и как следствие — нервных явлений (депрессии, возбуждения, припадков). Смерть наступает в результате поражения клеток, нарушения функции всех систем организма, особенно органов кроветворения и кровообращения.

Виремия и выделения вируса с секретами и экскретами происходят в течение всего периода болезни. У хронически больных животных вирус выделяется до трех месяцев.

Патологоанатомические изменения. При КЧС они очень разнообразны и зависят от течения болезни и наличия осложнений секундарной инфекцией. Кожа ушей, шеи, живота, внутренней стороны бедер багрово-красная с точечно-пятнистыми кровоизлияниями. Лимфатические узлы, особенно головы, шеи, мраморные на разрезе; в различных органах выраженные явления геморрагического диатеза. Кровоизлияния встречаются в корковом слое почек, в слизистой оболочке лоханки, мочеточников и мочевого пузыря. По краям селезенки часто наблюдают инфаркты. На слизистой кишечника и легких — серозно-катаральные или крупозно-геморрагические воспаления.

При чуме, осложненной пастереллезом (грудная форма), основные изменения наблюдают в органах грудной полости: крупозно-геморрагическая пневмония, плеврит, перикардит, кровоизлияния на слизистой гортани, трахеи, в почках и кишечнике.

Гистологические изменения при КЧС неспецифичны. В селезенке, в зоне инфаркта, отмечают некроз ткани, а вне зоны — кровоизлияния, группы незрелых клеток лимфоидного ряда. В ЦНС обнаруживают признаки негнойного лимфоцитарного энцефаломиелита.

Локализация вируса. Вирус пантропен, накапливается во всех органах и тканях, но преимущественно в лимфоузлах, костном мозге, слизистой оболочке кишечника и эндотелии кровеносных сосудов. Наибольшая его концентрация отмечается в тонзиллярных лимфоузлах.

Вирус размножается в лейкоцитах периферической крови и накапливается в крови в максимальной концентрации уже на третий день после подъема температуры тела. Он выявлен также в эпителии миндалин, подчелюстных, заглоточных, мезентериальных и других лимфоузлах, в респираторных путях и кишечном тракте, слизистой мочевого и желчного пузыря, поджелудочной, щитовидной и слюнных железах. Наивысшие титры вируса обнаруживают в период с 3-го по 7-й день болезни.

Трансплацентарная передача ВКЧС приводит к рождению клинически здоровых, но инфицированных поросят, которые в течение 4—6 мес выделяют вирус в больших количествах.

Источник инфекции — больные свиньи и вирусоносители. К КЧС восприимчивы только свиньи независимо от возраста. Особую опасность представляют свиньи с хроническим, инаппарантным и атипичным течением болезни, а также вирусоносители в инкубационном периоде болезни и реконвалесценты. Вирусоносительство сохраняется до гибели животного. Рассеивание вируса происходит с экскретами и секретами.

Главный путь распространения чумы — реализация продуктов убоя свиней-вирусоносителей. Есть данные о передаче вируса комарами. Циркуляция в природе главным образом осуществляется трансплацентарной передачей, обеспечивающей врожденную персистенцию вируса у плодов и новорожденных поросят.

Большое значение для распространения болезни имеет существование резервуаров инфекции среди диких кабанов. Передача вируса от диких свиней домашним происходит в случаях пользования ими одних и тех же кормов (корнеплодов в буртах, соломы в скирдах). Заражению же диких кабанов способствует несоблюдение ветеринарно-санитарных правил в неблагополучных по КЧС хозяйствах (отсутствие скотомогильников, убойных площадок).

Природная очаговость КЧС определяется активным расселением кабанов. Распространению вируса способствует миграция отдельных кабанов на расстояние до 20 км в день, поэтому необходим регулярный эпизоотологический надзор за дикими кабанами.

Чума свиней не имеет сезонности и периодичности. При заносе вируса протекает она в виде эпизоотий. В свежих очагах при наличии неиммунного поголовья через 10—14 дней заболевают почти все. В случае заноса вируса с инфицированным кормом поголовное заболевание наблюдают через 2—3 дня. Заболеваемость составляет 95—100 %, летальность — 60—100 %.

Диагностика. Диагноз ставят на основании эпизоотологических данных, клинических признаков, патологоанатомических изменений и результатов лабораторных исследований. Частая вакцинация свиней против чумы создает иммунный фон, который влияет на клинико-эпизоотологические характеристики болезни, поэтому только лабораторная диагностика позволяет установить правильный диагноз.

Патологическим материалом для лабораторной диагностики служат полученные от больных животных пробы крови, взятой с антикоагулянтом, и от вынужденно убитых животных или трупов — кусочки селезенки, миндалин, лимфатических узлов, почек, легких, поджелудочной железы, грудная кость.

Лабораторная диагностика. Обнаружение вирусной нуклеиновой кислоты. Методы ПЦР и ДНК-зонда позволяют дифференцировать пестивирусы (КЧС и вирусы диареи КРС).

ПЦР. Выделяют рибонуклеиновую кислоту из образцов тканей животных фенольным методом, подвергают обратной транскрипции и амплифицируют. Метод обладает высокой чувствительностью и специфичностью.

ДНК-зонд. В качестве гибридизационного зонда используют комплементарную ДНК к участку гена белка Р125, меченную 22 Р.

Обнаружение вирусного антигена (белка).

РИФ. Из лейкоцитарного концентрата проб крови больных или подозрительных по заболеванию животных, а также из костного мозга грудной кости делают мазки, а из их органов — срезы. На наличие вируса КЧС указывает специфическое свечение цитоплазмы. Следует иметь в виду, что вакцинный вирус сохраняется в организме свиней до 15 дней после вакцинации и в этот период не дифференцируется в РИФ от полевого вируса.

РНГА с антительным эритроцитарным диагностикумом. Вирус считается обнаруженным при наличии гемагглютинации в суспензии из патологического материала в разведениях не менее чем 1 : 8.

ИФА. В иммуноферментных конъюгатах используют иммуноглобулины баранов, инфицированных ВКЧС. Метод позволяет при постмортальной диагностике выявлять вирус со 100%-ной эффективностью без предварительного биологического накопления. Обнаруживают вирус также в культуре клеток и в объектах ветеринарного надзора (зерне, почве, воде). На основе моноклональных антител разработана тест-система, позволяющая дифференцировать вакцинный и полевые штаммы ВКЧС, а также вирус диареи КРС.

РДП слабочувствительна, дает положительный результат в 50 % случаев.

РИОЭФ (реакция иммуноэлектроосмофореза), в которой антигены и антитела движутся строго навстречу друг другу под действием электрического поля. РИЭОФ значительно чувствительнее, чем РДП, и скорее (за 30 мин) выявляет вирус в мезентериальных лимфоузлах и суспензии ткани поджелудочной железы.

Обнаружение вируса биопробой. Биопробу при диагностике КЧС ставят в сомнительных случаях. Она позволяет, с одной стороны, обнаружить ВКЧС, с другой — дифференцировать его от сходно протекающей африканской чумы свиней. Биопробу ставят по схеме иммунологической биопробы.

Из благополучного по инфекционным болезням хозяйства берут иммунизированных и неиммунизированных против КЧС поросят в возрасте 2—3 мес массой 20—30 кг. В качестве материала для заражения используют 10%-ную суспензию органов (селезенки, лимфоузлов, костного мозга) или кровь от павших животных. Материал вводят подкожно. Диагноз на КЧС считают установленным, если неиммунизированные животные на 2—5-й день заболевают и в течение 7—10 дней погибают, а иммунизированные остаются здоровыми. Если же в результате заражения заболевают и иммунизированные животные, то имеются основания для установления африканской чумы свиней, что должно быть подтверждено выделением вируса и его идентификацией.

Выделение вируса проводят на перевиваемой линии культуры клеток РК-15 (почки поросенка), выращенной на покровных стеклах в пробирках. Вирус КЧС в культуре клеток РК-15 не вызывает ЦПД; поэтому индикацию его проводят методом РИФ.

Идентификацию вируса проводят с помощью серологических реакций РИФ и РИГА.

Ретроспективная серологическая диагностика. В настоящее время в лабораторной диагностике используют три метода обнаружения специфических к вирусу КЧС антител:

твердофазный непрямой вариант ИФА. Метод легок в выполнении, дешев, высокочувствителен и рекомендован к использованию при крупномасштабных обследованиях;

непрямой метод РИФ;

PH в сочетании с РИФ. PH ставят в культуре клеток РК-15, выращенной на покровных стеклах в пробирках. Учет реакции проводят через 48 ч. Присутствие вируса обнаруживают в люминесцентном микроскопе — видны флуоресцирующие фокусы (бляшки), состоящие из 20—30 инфицированных клеток. Присутствие антител нейтрализует вирус и вызываемый им эффект. Поэтому реакцию часто называют РНФБ (PH флуоресцирующих микробляшек). Реакция очень трудоемка.

Дифференциальная диагностика. КЧС необходимо отличать от африканской чумы свиней, болезни Ауэски, вирусной диареи, парагриппа и бактериальных инфекций (пастереллеза, сальмонеллеза, рожи).

При африканской чуме свиней все клинические и патологоанатомические признаки выражены ярче. Для дифференциации ставят иммунологическую биопробу. Вирусную диарею у инфицированных свиней устанавливают с помощью ПЦР. Другие предполагаемые вирусные болезни свиней исключают вирусологическими исследованиями.

Бактериальные инфекции дифференцируют по эпизоотологическим особенностям (возрастная чувствительность), клиническим и патологоанатомическим признакам, результатам бактериологических исследований и эффективности лечения антибиотиками.

Иммунитет и специфическая профилактика. Животные-реконвалесценты приобретают стойкий иммунитет, продолжающийся несколько лет. Пассивный иммунитет непродолжителен — до 10— 12 дней.

Иммунитет при КЧС обусловлен вируснейтрализующими антителами. Однако формирование резистентности к заражению вакцинированных свиней происходит до выявления вируснейтрализующих антител. Вероятно, вирус нейтрализуется клетками, в частности естественными киллерами и цитотоксическими лимфоцитами.

С 1980 г. специфическая профилактика КЧС с успехом осуществляется живыми вакцинами из штаммов К и ЛК-ВНИИВВиМ. С помощью живой вакцины ЛК-ВНИИВВиМ можно создавать специфическую защиту от заболевания свиней уже через 48 ч после однократного внутримышечного ее введения. Новорожденных поросят вакцинируют перорально тотчас после рождения до приема молозива. Получена живая вакцина для пероральной иммунизации диких кабанов. Инактивированные вакцины в настоящее время не применяют. Разработаны генно-инженерные вакцины против КЧС, но и они пока не имеют широкого применения.

Лечение поросят осуществлялось гипериммунными сыворотками с различной эффективностью, что зависело от стадии болезни в момент серотерапии.

Если вы нашли ошибку, пожалуйста, выделите фрагмент текста и нажмите Ctrl+Enter.