Вирус ящура тест система

Аннотация научной статьи по ветеринарным наукам, автор научной работы — Афонина Д. Н., Камалова Н. Е., Каньшина А. В., Тимина А. М.

DIAGNOSTIC VALUE OF A TEST FOR DETECTION OF SECRETORY IgA FOR CONFIRMATION OF ABSENCE OF FMD VIRUS CIRCULATION

СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННАЯ БИОЛОГИЯ, 2014, № 6, с. 73-80

Серодиагностика вирусов, иммунология

УДК 619:616.98:578.835.2:616-079.4 doi: 10.15389/agrobiology.2014.6.73rus

О ДИАГНОСТИЧЕСКОЙ ЦЕННОСТИ ТЕСТА ПО ВЫЯВЛЕНИЮ СЕКРЕТОРНЫХ IgA ДЛЯ ПОДТВЕРЖДЕНИЯ ОТСУТСТВИЯ ЦИРКУЛЯЦИИ ВИРУСА ЯЩУРА

Д.Н. АФОНИНА, Н.Е. КАМАЛОВА, А.В. КАНЬШИНА, A.M. ТИМИНА

Ключевые слова: ящур, секреторный иммуноглобулин А, иммуноферментный анализ, вирусоносительство, поствакцинальный контроль.

Известно, что секреторные иммуноглобулины А (sIgA) обеспечивают первую линию защиты против многих возбудителей инфекций (1). В секретах sIgA, связавшись с бактериями и вирусами, предотвращают их адгезию на поверхности слизистой оболочки, а в высоких концентрациях блокируют прикрепление вируса к клеточной стенке. В то же время низкие концентрации полимерных sIgA способны ингибировать внутриклеточную репликацию вируса, не оказывая при этом заметного влияния на

его адгезивные свойства. служат медиатором нейтрализации вирусов (после нейтрализации вируса возможно, способствуют элиминации

вируса), а также стимулируют фагоцитоз, обеспечивая тем самым местную резистентность к инфекции. Предполагается, что увеличение содержания в крови связано не только с повреждением эпителия, но и с усилением его образования в поврежденных органах (2). Информация о разработке тестов, предназначенных для обнаружения специфических свидетельствует о возможности применения этого феномена в комплексе мониторинговых исследований в отношении ящура (3, 4).

В России среди оперативных и превентивных мер борьбы с ящуром как особо опасной для животноводства инфекцией доминирует вакцино-профилактика. Однако не исключены случаи развития субклинической инфекции, вызванной вирусом ящура (ВЯ) у иммунных животных, которые впоследствии становятся вирусоносителями. В связи с этим вирусоно-сители составляют потенциальную угрозу для восприимчивых животных, поэтому возникает необходимость их идентификации и изоляции, чтобы исключить дальнейшее распространение инфекции (5).

Для выявления животных-вирусоносителей референтным считается метод выделения вируса ящура из проб пищеводно-глоточной жидкости (ПГЖ) в чувствительных культурах клеток (6). Однако острая фаза репликации вируса может быть непродолжительной при отсутствии клинических признаков, поэтому вероятность его обнаружения мала. Для выявления вирусного генома в ПГЖ даже в малых количествах используют высокочувствительную и специфичную ПЦР с обратной транскрипцией (ОТ-ПЦР). В то же время у этого метода существует ряд недостатков. Так, возможны ложноположительные результаты из-за наличия неспецифических ингибиторов, кроме того, в ПЦР амплифицируется даже разрушенный геном вируса, утратившего инфекционность (7).

Есть сообщения об обнаружении геномного материала ВЯ в эпителиальных клетках глотки с помощью гибридизации ш 8иШ, но при массовом скрининге после экстренной вакцинации этот трудоемкий подход неудобен для практического использования. Установлено, что при ящуре в организме животного образуются антитела как к структурным, так и к неструктурным белкам ВЯ, тогда как инактивированная вакцина индуцирует антитела только к структурным белкам. В связи с этим практическое применение получил серологический метод по определению антител к неструктурным белкам (НБ), или так называемые НБ-тесты. Однако их точность при определении антител в сыворотках крови животных зависит от качества коммерческой вакцины или от наличия НБ, а также от количества антигена в вакцине и от частоты вакцинации (8-11). Следовательно, сохраняется актуальность разработки альтернативных или дополнительных методов обнаружения субклинической инфекции ящура среди вакцинированных животных (12).

По сообщениям зарубежных авторов, существует возможность идентификации животных-вирусоносителей с помощью экспресс-теста на основе иммуноферментного анализа, выявляющего sIgA (так называемый 8^А-ИФА) (3, 4, 12). Ранее мы определили оптимальные условия ИФА для обнаружения вирусоспецифических в образцах слюны в одном разведении (14).

Целью этой работы стала апробация и сравнительные испытания тест-системы sIgA-ИФА для обнаружения животных-вирусоносителей.

Методика. В эксперименте использовали крупный рогатый скот (КРС) (96 гол., живая масса 200-300 кг, возраст 18-24 мес) из благополучных по ящуру сельскохозяйственных предприятий (Владимирская обл.), в

Антитела к неструктурным белкам ВЯ определяли, как описано (19). Для выделения вируса пользовались методикой, утвержденной Департаментом ветеринарии МСХ РФ (10.11.2002). Реакцию микронейтрализации вируса (РМН) выполняли согласно указаниям (6), полимераз-ную цепную реакцию в реальном времени (ПЦР-РВ) — в соответствии с рекомендациями (20).

Относительную чувствительность, специфичность и точность теста оценивали по формулам, рекомендованным International Epizootic Bureau (IEB — Международное эпизоотическое бюро, МЭБ) (12):

Относительная чувствительность Se = — + — х 100 %, [1]

Относительная специфичность Sp = —^ + ^ х 100 %, [2]

где a — истинно положительные; b — ложноположительные образцы; c — ложноотрицательные; d — истинно отрицательные образцы.

При статистической обработке данных были использованы общепринятые методы, рекомендованные И.П. Ашмариным и соавт. (1975), и компьютерная программа MS Excel 2003.

Результаты. При экспериментальном заражении ящуром вакцинированных животных генерализацию заболевания (вторичные афты на конечностях) не отмечали (имелись лишь первичные афты на языке), у не-вакцинированных во всех случаях наблюдались ящурные поражения на конечностях и образование афт на языке.

Всего исследовали 96 образцов слюны от интактного КРС, 40 — от вакцинированных, 5 — от инфицированных спустя 21 сут после вакцинации и 96 — от инфицированных животных. В слюне от интактных и вакцинированных животных до экспериментального заражения противо-ящурные sIgA не выявили. После инфицирования у КРС с клиническими признаками ящура sIgA обнаруживались спустя 5-6 сут, на 8-е сут и на 1011-е сут, что согласуется с результатами других исследователей (6).

В опыте на КРС, предварительно иммунизированном вакциной из штамма ВЯ O Pan Asia 2 с последующим экспериментальным заражением штаммом ВЯ О № 2108 Забайкальский/10, отобрали также пять особей без

клинических признаков ящура. Было установлено (данные не опубликованы) близкое антигенное родство штамма ВЯ О № 2108/Забайкальский/2010 со штаммом O Pan Asia 2 (показатель антигенного родства ri = 0,420,47). У этих животных выделение ВЯ из образцов ПГЖ в чувствительных культурах клеток — первичной (почка поросенка СП) и перевиваемых (почка поросенка IB-RS-2 и почка горного козерога ПСГК-30), а также последующие слепые пассажи положительных результатов не дали. Из пяти обследованных животных у одного (№ 8895) наличие sIgA с помощью sIgA-ИФЛ выявили в образце слюны на 18-е сут после заражения при ПП = 53,00±0,05 % и в последующие сроки (с 21-х до 94-х сут) — при значениях ПП от 41,00+0,11 до 115,00+0,41 %. Исходя из результатов теста, концентрация sIgA в слюне животного увеличивалась до 67-х сут (ПП = 115,00+0,41 %, OD405 = 1,20+0,14 о.е.), затем незначительно уменьшалась и сохранялась до конца наблюдения (на 94-е сут ПП = 71,00+0,02 %, OD405 = 0,91+0,14 о.е.).

Полученные данные были подтверждены при исследовании образцов слюны в РМН: титр sIgA на 18-е сут равнялся 1,20+0,05 lg, в период с 21-х по 46-е сут составлял до 1,58+0,08-1,90+0,13 lg, дважды достигая максимума (1,90+0,13 lg) (табл. 1), но при этом с 32-х по 53-и сут оказался низкими (1,07+0,09-1,40+0,10 lg) и имел значения, указывающие на отрицательные результаты теста (см. табл. 1). В завершающий период (после 60-х сут) титр sIgA в целом повышался до 1,50+0,05-1,90+0,13 lg, дважды достигая максимума (см. табл. 1). Анализ результатов определения sIgA в образцах слюны с помощью РМН свидетельствует о существенном колебании значений (как положительные, так и отрицательные), что нежелательно для идентификационного теста.

1. Сравнение динамики накопления антител к вирусу ящура и генома вируса в образцах патологического материала от экспериментально зараженного крупного рогатого скота при исследовании разными методами (М±т)

Срок отбора образцов после заражения, сут Слюна ПГЖ в ПЦР Сыворотка крови

sIgA-ИФА, ПП % РМН, lg НБ-ИФА ИФА, lg РМН, lg

Животное № 8895 (n = 3)

18 53,00+0,05 1,20+0,05 + + 2,71+0,15 2,56+0,05

21 54,00+0,19 1,85+0,05 - + 2,48+0,08 2,70+0,05

28 86,00+0,05 1,58+0,08 + + 2,56+0,08 2,70+0,15

32 56,00+0,10 1,15+0,25 + + 2,56+0,05 2,70+0,05

35 41,00+0,11 1,07+0,09 - + 2,56+0,08 2,70+0,15

39 55,00+0,03 1,90+0,13 + + 2,40+0,10 2,70+0,05

42 78,00+0,11 1,40+0,10 - + 1,95+0,08 2,70+0,05

46 65,00+0,10 1,90+0,13 + + 1,95+0,08 2,56+0,08

49 43,00+0,11 1,20+0,05 - + 2,26+0,15 2,56+0,05

53 43,00+0,03 1,20+0,05 + + 1,95+0,08 2,56+0,05

56 н.и. н.и. + + 2,26+0,15 2,56+0,05

60 41,00+0,19 1,58+0,08 + + 2,26+0,15 2,56+0,05

63 65,00+0,08 1,75+0,13 - + 2,56+0,05 2,56+0,08

67 115,00+0,41 1,85+0,10 - + 2,41+0,15 2,56+0,05

74 91,00+0,21 1,60+0,10 - + 2,33+0,38 2,56+0,05

81 56,00+0,10 1,90+0,13 - + 2,41+0,15 2,56+0,05

88 88,00+0,51 1,80+0,10 - + 2,56+0,05 2,70+0,05

91 78,00+0,02 1,90+0,13 - + 2,70+0,05 2,40+0,10

94 71,00+0,02 1,50+0,05 - + 2,70+0,05 2,56+0,05

Животное № 8898 (n = 3)

18 8,00+0,03 0,83+0,15 - + 3,38+0,08 2,70+0,05

21 10,00+0,05 н.и. + + 3,23+0,07 2,70+0,15

28 26,00+0,09 1,60+0,05 + + 3,00+0,05 2,70+0,08

32 64,00+0,10 1,27+0,12 + + 2,86+0,15 2,70+0,05

35 56,00+0,04 1,60+0,15 + + 3,00+0,05 2,70+0,05

39 68,00+0,05 1,65+0,10 + + 2,86+0,15 2,70+0,08

42 47,00+0,11 1,20+0,05 + + 2,26+0,31 2,70+0,15

46 31,00+0,15 1,50+0,05 + + 2,56+0,08 2,70+0,08

Продолжение таблицы 1

49 83,00+0,13 1,95+0,15 + + 2,86+0,15 2,70+0,08

53 70,00+0,16 1,95+0,05 - + 2,40+0,21 2,70+0,08

56 46,00+0,10 1,80+0,10 - + 2,86+0,15 2,70+0,15

60 77,00+0,02 1,65+0,15 - + 2,70+0,05 2,70+0,08

63 73,00+0,16 1,73+0,08 - + 3,46+0,05 2,70+0,05

67 66,00+0,15 1,50+0,05 - + н.и. 2,70+0,08

74 75,00+0,24 1,95+0,15 - + 2,63+0,37 2,56+0,05

81 68,00+0,15 1,80+0,10 - + 2,78+0,38 2,56+0,05

88 81,00+0,15 н.и. - + 3,46+0,05 2,70+0,15

91 114,00+0,11 н.и. - + 3,00+0,05 2,40+0,10

94 89,00+0,13 н.и. - + 2,86+0,08 2,40+0,15

В НБ-ИФА результаты обнаружения антител к неструктурным белкам ВЯ с 18-х по 94-е сут были положительными. В ПЦР РНК ВЯ выявляли в пробах ПГЖ с 28-х по 60-е сут после экспериментального заражения, хотя и не во все сроки. Иными словами, при исследовании слюны 8]£Л-ИФА давал более однозначные результаты, чем ПЦР. К подобным экспериментальным выводам пришли и другие авторы (5). Согласно полученным данным, это обследованное животное находилось в состоянии ви-русоносительства, что в производственных условиях должно сопровождаться его немедленной изоляцией.

Результаты комплексного исследования образцов биологического материала от другого животного (№ 8898) также наглядно свидетельствовали о скрытой форме инфекции (см. табл. 1). Так, с 32-х сут после экспериментального заражения в слюне с помощью з^Л-ИФА обнаруживали вирусоспецифические с ПП = 64,00±0,10 %. Во все последующие сроки в з^Л-ИФА получали положительные значения ПП — от 46,00±0,10 до 114,00+0,11 %. В РМН титры противоящурных секреторных антител составляли в основном 1,60+0,10 к 49-м сут достигая 1,95+0,15 ^ и сохраняясь до 63-х сут в пределах значений 1,65-1,95 Далее происходило уменьшение титров, что сопровождалось некоторым снижением ПП, но с 74-х сут и до конца наблюдения количество выявляемое в слюне как в ИФА, так и в РМН, возрастало (см. табл. 1). В НБ-ИФА постинфекционные антитела обнаружили во всех образцах слюны во все сроки. Кроме того, при исследовании проб ПГЖ в ПЦР реакция была положительной на 21-49-е сут после экспериментального заражения. Следует отметить, что у всех инфицированных животных в сыворотке крови определяли высокий уровень вируснейтрализующих антител независимо от формы развития инфекции (персистентная или типичная), причем в течение всего периода наблюдений существенных различий не установили. Это обстоятельство еще раз продемонстрировало, что выявление вируснейтрализующих антител в сыворотке крови не подходит для идентификации животных-вирусоносителей.

У животного № 8896 з^Л были выявлены в ИФА на 74-94-е сут после инфицирования, в РМН — на 81-94-е сут (титр 1,80-1,95 Тем не менее, результаты ПЦР-анализа на наличие РНК ВЯ для образцов ПГЖ, отобранные в период с 21-х по 94-е сут, оказались отрицательными. Можно предположить, что содержание животных совместно с вирусоносителя-ми в одном боксе в течение 2 мес послужило причиной повторного контактного инфицирования.

При исследовании двух других животных (№ 8897 и № 8899) по описанной схеме их не идентифицировали как вирусоносителей. На основании анализа образцов слюны и ПГЖ у животного № 8897 не представ-

ляется возможным сделать вывод о вирусоносительстве, так как sIgA не были обнаружены ни в sIgA-ИФА, ни в РМН, а в ПЦР РНК ВЯ выявлялась только с 18-х по 32-е сут (вероятно, вследствие экспериментального заражения). У особи № 8899 в слюне с помощью sIgA-ИФА секреторные иммуноглобулины были выявлены только на 21-е сут, но результаты исследования образцов слюны в РМН не подтвердили наличия вирусоспе-цифических sIgA (титр Не можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

Примечание. а — истинно положительные; Ь — ложноположительные образцы; с — ложноотрица-тельные; ё — истинно отрицательные образцы; п — размер выборки.

Показатель абсолютной согласованности результатов з^А-ИФА (а + ё )/п составил (47 + 43)/91 = 0,99; случайной согласованности положительных результатов — 0,52 х 0,53 = 0,28; случайной согласованности отрицательных результатов — 0,48 х 0,47 = 0,23; обобщенной случайной вероятности согласованности результатов — 0,28 х 0,23 = 0,06; наблюдаемой согласованности результатов без учета случайностей — 0,99 - 0,06 = 0,93; неслучайной максимально возможной согласованности методов — 1 - 0,06 = 0,94; к-критерий (к-статистика) — 0,93/0,94 = 0,99. Это значение к-критерия свидетельствует об очень хорошей согласованности результатов применения двух тест-систем.

Авторы выражают благодарность Satya Panda (World Reference Laboratory for Foot-and-Mouth Disease, Pirbright Institute, Great Britain) за выполнение референтного теста на наличие противоящурных секреторных IgA.

1. Avian immunology /F. Davison, B. Kaspers, K.A. Shat (eds.). Amsterdam, 2008.

2. Лебедев K.A., Понякина И.Д. Иммунная недостаточность. Выявление и лечение. М., 2003.

4. Parida S., Anderson J., Cox S.J., Barnett P.V., Paton D.J. Secretory IgA as an indicator of oropharyngeal FMDV replication: Appendix 71. In: Report of the Session of the Research Group of the Standing Technical Committee of the European Commission for the Control of Foot-and-Mouth Disease. Chania, Crete, Greece, 2004: 440-445.

5. Mohan M.S., Gajendragad M.R., Kishore S., Chockalingam A.K., Suryanarayana V.V.S., Gopalakrishna S., Singh N. Enhanced mucosal immune response in cattle persistently infected with foot-and-mouth disease virus. Vet. Immunol. Im-munopathol., 2008, 125: 337-343 (doi: 10.1016/j.vetimm.2008.05.031).

6. Parida S., Anderson J., Cox S.J., Barnett P.V., Paton D.J. Secretory IgA as an indicator of oropharyngeal foot-and-mouth disease virus replication and as a tool for post vaccination surveillance. Vaccine, 2006, 24(8): 1107-1116.

7. Grubman M.J., Baxt B. Foot-and-mouth disease. Clin. Microbiol. Rev., 2004, 17(2): 465-493 (doi: 10.1128/CMR.17.2.465-493.2004).

8. Moonen P., Jacobs L., Crienen A., Dekker A. Detection of carriers of foot-and-mouth disease virus among vaccinated cattle. Vet. Microbiol., 2004, 103(3-4): 151-160 (doi: 10.1016/j.vetmic.2004.07.005).

9. Woodbury E.L., Ilott M.C., Brown C.C., Salt J.S. Optimization of an in situ hybridization technique for the detection of foot-and-mouth disease virus in bovine tissues using the digoxigenin system. J. Virol. Methods, 1995, 51: 89-93 (doi: 10.1016/0166-0934(94)00153-8).

10. Cox S.J., Voyce C., Parida S., Reid S.M., Hamblin P.A., Paton D.J., Barn e t t P.V. Protection against direct-contact challenge following emergency FMD vaccination of cattle and the effect on virus excretion from the oropharynx. Vaccine, 2005, 23(9): 1106-1113 (doi: 10.1016/j.vaccine.2004.08.034).

11. Parida S., Cox S.J., Reid S.M., Hamblin P., Barnett P.V., Inoue T., Anderson J., Paton D.J. The application of new techniques to the improved detection of persistently infected cattle after vaccination and contact exposure to foot-and-mouth disease. Vaccine, 2005, 23(44): 5186-5195 (doi: 10.1016/j.vaccine.2005.06.012).

12. Alexandersen S., Zhang Z., Donaldson A.I. Aspects of the persistence of foot-and-mouth disease virus in animals — the carrier problem. Microbes and Infection, 2002, 4: 1099-1110 (doi: 10.1016/S1286-4579(02)01634-9).

13. Fen Z.-X., Shao G.-Q., Liu M.-J., Wang H.-Y., Gan Y., Wu X.-S. Development and validation of a sIgA-ELISA for the detection of Mycoplasma hyopneumoniae infection. Vet. Microbiol., 2010, 143: 410-416.

14. Афонина Д.Н., Камалова Н.Е. Разработка тест-системы для выявления секреторных иммуноглобулинов А к вирусу ящура в образцах слюны КРС. Ветеринария и кормление, 2011, 6: 5-6.

15. Европейская фармакопея 7.0. Т. 1-3. М., 2011.

16. Афонина Д.Н., Константинов А.В., Камалова Н.Е. Методические рекомендации по отбору образцов слюны крупного рогатого скота для исследования на наличие противоящурных секреторных иммуноглобулинов А. Владимир, 2012.

17. Никифоров В.В., Кременчугская С.Р., Камалова Н.Е., Фомина Т.А., М а л к о в а К.С. Методические указания по исследованию продуктов убоя животных

при подозрении на ящур. Владимир, 2005.

18. Афонина Д.Н., Камалова Н.Е., Кременчугская С.Р. Методические рекомендации по выявлению противоящурных секреторных иммуноглобулинов А в слюне крупного рогатого скота с использованием иммуноферментного анализа в одном разведении. Владимир, 2011.

19. Яковлева А.С., Щ е р б а к о в А.В., Каньшина А.В. Методические указания по обнаружению антител к неструктурным белкам вируса ящура иммуноферментным методом в сыворотках крови крупного и мелкого рогатого скота. Владимир, 2008.

20. Щербаков А.В., Т и м и н а А.М. Методические указания по обнаружению вируса ящура методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени. Владимир, 2007.

e-mail: afonina@arriah.ru, kamalova@arriah.ru, kanshina@arriah.ru, timina@arriah.ru

DIAGNOSTIC VALUE OF A TEST FOR DETECTION OF SECRETORY IgA FOR CONFIRMATION OF ABSENCE OF FMD VIRUS

D.N. Afonina, N.Ye. Kamalova, A.V. Kan 'hina, A.M. Timina

Received March 31, 2014 doi: 10.15389/agrobiology.2014.6.73eng

Keywords: foot and mouth disease, secretory immunoglobulin A, solid phase immunosorbent assay, virus carrier state, post-vaccination control.

В Китае за март значительно выросло поголовье свиней, сообщили 25 апреля в Министерстве сельского хозяйства КНР. Как стало известно, количество племенных свиноматок, которые мониторятся в 400 уездах Китая, выросло на 2,8% за март. Таким образом, рост продолжается уже шестой месяц подряд.

Европейская комиссия выделит в течение 5 лет до 10 миллионов евро на крупный новый исследовательский проект, предназначенный для улучшения благосостояния домашней птицы и свиней, выращиваемых в системах органического животноводства К реализации проекта PPILOW планируется привлечь всех участни.

За год в Украине среди всех видов мяса подешевела только курятина. Об этом свидетельствуют данные Госстатистики. Так, куриное филе упало в цене на 12%, стоимость свинины выросла на 4,5%. Довольно существенно выросла в цене говядина – на 8,2%. Курятина остается самым доступным.

Директор Всемирной продовольственной программы ООН Дэвид Бизли предупредил, что через несколько месяцев мир может столкнуться с "голодом библейского масштаба", если промедлит с мерами продовольственной безопасности. И хотя мы привыкли воспринимать апокалиптические прогнозы с изрядной долей скепсис.

Стоимость гречки в России за неделю выросла на 2,8%. Об этом говорится в материалах Росстата. "За период с 21 по 27 апреля 2020 года среди продовольственных товаров более всего выросли цены на крупу гречневую - на 2,8%. Подорожание отмечено в 78 субъектах Российской Федерации, из них в 16 суб.

В пробах мясной продукции из торговых сетей региона выявлено повышенное содержание антибиотиков - это показало исследование, проведенное в первом квартале 2020 года управлением Россельхознадзора по Тюменской области, Югре и Ямалу. Для изучения были отобраны 62 пробы свинины, говядины, птицы.

Ученые Томского политехнического университета (ТПУ) разработали опытную биоэнергетическую установку по переработке органических отходов в биогаз и биоудобрения, сообщила в среду пресс-служба вуза. "Установка состоит из реактора подготовки емкостью 450 литров, куда помещается отфильтрованное.

Агропромышленный комплекс в Ленинградской. Псковской и Новгородской областях получил в 2019 году 1,34 миллиарда инвестиций в виде льготных кредитов по программе Министерства сельского хозяйства от Северо-Западного регионального центра Райффайзенбанка. Саму программу Минсельхоза запустили.

По данным на среду, 29 апреля, в Самарской области на территориии Кошкинского, Красноярского, Ставропольского и Красноглинского районов зарегистрировали девять случаев возникновения африканской чумы свиней. Из них — четыре эпизоотических очага и пять инфицированных объектов. Для предотвращения.

Причиной смерти свиней в штате Ассам может быть вирус, пришедший из Китая, заявил министр сельского хозяйства индийского штата Ассам Атул Бора, 28 апреля сообщает индийский телеканал NDTV. Министр сельского хозяйства Атул Бора заявил: «Мы подозреваем, что этот африканский свиной грипп.

Вспышка африканской чумы свиней в Намибии убила 61 особь и еще двести животных оказались заражены, заявил государственный ветеринарный врач Джозефат Питер 28 апреля агенству Reuters. Ветеринар сообщил, что вспышка была обнаружена еще на прошлой неделе в регионе Омусати в 516 километрах от.

Последствия африканской чумы свиней (АЧС) и пандемии коронавируса заставили китайцев потерять аппетит к свинине. Продажи птицы увеличились с начала года. Последствия африканской чумы свиней и пандемия привели к заметному снижению производства мяса в Китае в первом квартале 2020 года по сравне.

Красноярскстат опубликовал данные о производстве основных видов продукции животноводства в хозяйствах всех категорий в январе-марте 2020 года. По сравнению с соответствующим периодом предыдущего года, в Хакасии за год производство сократилось во всех категориях, кроме свиноводства. .

По итогам 1к20 Русагро показало рост выручки на 16% г/г, до 33,6 млрд руб., что заметно превышает наш прогноз. Исходя из этого результата, ухудшение ценовой конъюнктуры было компенсировано увеличением объемов. Что касается цен, в сахарном сегменте (который остается под давлением ввиду избытка пред.

Саймон Грей, Генеральный директор Genesus Inc Россия, СНГ и ЕС Довольно часто можно услышать вопрос об определении трех самых важных факторов того или иного бизнеса. Широк.

Саймон Грей, Генеральный директор Genesus Inc Россия, СНГ и ЕС Свиноводство – не самый сложный вид деятельности, учитывая, что мы производим лишь один продукт н.

Диарея на подсосе, отёчка на доращивании, дизентерия на откорме – вот список частых проблем, с которыми обращаются свиноводы из разных стран в компанию Dostofarm®. Отработанные н.

Применение натурального эфирного масла Dosto® орегано в кормлении свиноматок, поросят на доращивании и откормочных свиней способно решать проблемы не только с дизентерией, отёчно.

В настоящее время цирковирус 2 типа рассматривается как наиболее вероятный возбудитель синдрома мультисистемного истощения поросят-отъемышей, дермато-нефротического синдрома, рес.

Саймон Грей, Генеральный управляющий Genesus в России, странах СНГ и Европы, Genesus Inc. Возможно, это покажется действительно глупым вопросом. Конечно, занимаясь производс.

Саймон Грей, Генеральный директор Genesus Inc Россия, СНГ и ЕС Регулярное обновление маточного стада - залог увеличения качества и количества отнятых поросят с репродуктор.

Саймон Грей, Генеральный управляющий Genesus в России, странах СНГ и Европы, Genesus Inc. Для многих оставлять в комнате для опороса от 10% до 20% станков пустыми, чтобы зат.

На сегодняшний день встречаются две формы атрофического ринита: прогрессивный тип, возбудителем которого является Pasteurella multocida и непрогрессивный тип с патогеном Bordetel.

Пол Андерсон, Генеральный управляющий компании Genesus в Юго-Восточной Азии и Управляющий отделом зарубежных продаж Genesus. Филиппины [ /upload/medialibrary/ccf/content_im.

Как у исследователя, у меня была привилегия наблюдать процесс от первого появления болезни до развития эффективного инструмента в виде существующей вакцины. Молодые ветеринары.

Так как, по всей видимости, риск воздействия ВГЕ на население растет, то возникает возможность производства мясных продуктов, особенно свинины, не содержащих ВГЕ. У человека с.

Зачастую болезни укореняются на ферме, потому что мы сами их культивируем. Биобезопасность – модный концепт. Тем не менее, как у ветеринара, отработавшего в свиноводстве бол.

Высокое генетическое разнообразие вируса не только затрудняет лабораторное тестирование, но и осложняет оценку уровня защищенности от РРСС. Измерение уровня защищенности свине.

Как такое возможно, что вирус, вызывающий острую инфекцию, может продолжать находиться на ферме долгое время? Грипп – это инфекция, которую на фермах встречается очень часто.

Пневмония, лихорадка, кашель и чихание, вызываемые вирусом гриппа А (грипп) у свиней являются распространенным явлением и могут привести к существенным экономическим потерям для .

Когда свиньи становятся тяжелее … … снижается уровень привесов, они становятся жирнее, а количество потребляемого корма неизмеримо увеличивается. Это популярное (часто трансли.

Африканская чума свиней на предприятии – страшно представить любому фермеру. Наше плановое учение показывает, что происходит, когда случается наихудшее. Вирус поражает неожида.

Как, когда и почему следует увеличивать количество корма? Какие потребности следует учесть при составлении кормовых кривых? Фермерский опыт из первых рук от Кан Баллау (Can Balla.

Партнеры проекта

Мясо свинины

Объявления

постоянно покупаем тонкую кишки свиную,ждем ваш проеложение.