Стафилококк в воздухе помещения

Место отбора проб

Время отбора проб

Результаты исследования (КОЕ/м 3 )

Общее количество микроорганизмов

на золотистый стафилококк

на грамотрицательные бактерии

Реанимацион-ное отделение (палаты)

Подготовленные к работе

Во время работы

В воздухе больничных помещений доминируют золотистый стафилококк и стрептококки. При этом в 1 м 3 воздуха операционных залов, послеоперационных палат, перевязочных, отделений реанимации, родильных залов они должны отсутствовать.

В связи с ростом частоты заболеваний, вызываемых грамотрицательными бактериями, в нормативы включено определение их количества в 1 м 3 воздуха помещений лечебных учреждений.

Особый случай – воздух аптечных помещений, где из-за наличия антимикробных препаратов могут быстро погибать бактерии, но сохраняться грибы, поэтому их обязательно необходимо выявлять при исследовании воздуха аптек.

Дополнительные критерии. Как показатель запыленности и отсутствия влажной уборки расценивают присутствие спорообразующих палочек, а показателем влажности – плесневых грибов. Показатель плохой освещенности – отсутствие пигментообразующих форм бактерий (иногда этот показатель может быть определен по заданию фтизиатров).

Методы выделения микроорганизмов из воздуха. Известны два метода забора проб для бактериологического анализа воздуха. Самый простой, не требующий специальной аппаратуры, -седиментационный метод Коха, по которому о степени микробной обсемененности судят по количеству выросших колоний на МПА в чашке Петри после того, как 2 чашки выдерживают открытыми на воздухе в течение 30 мин, потом посевы инкубируют в термостате при 37 0 С и выявляют видовую принадлежность микроорганизмов. Чаще всего в воздухе определяют ОМЧ (применяют чашки с МПА), содержание стафилококков (применяют чашки с желточно-солевым агаром), по эпидемическим показаниям определяют содержание стрептококков (применяют чашки с кровяным агаром). При обследовании воздуха аптек производят определение содержания грибов, используя чашки со средой Сабуро. Результаты оценивают по суммарному числу колоний, выросших на обеих чашках. Про спокойном состоянии воздуха на площадь 100 см 2 оседает столько микроорганизмов, сколько их содержится в 0,01 м 3 воздуха. Этот метод используется как ориентировочный. Определение микробного числа воздуха поводят по формуле Омелянского:

х = ------------------------, где а – количество выросших на чашке колоний;

bx10xtb– площадь чашки;t– время в течение которой чашка была открыта; 5 – время по расчету Омелянского; 10 – объем воздуха ( в литрах), из которого происходит оседание микробов за 5 мин; 100 – площадь в см 2 , на которую происходило оседание; 1000 – искомый объем воздуха в литрах.

Р
ис. 1. Аппарат Кротова для бактериологического исследования воздуха.

Более совершенным является аспирационный метод с использованием аппарата Кротова (рис. 1), который основан на ударном действии струи воздуха. Принцип действия прибора основан на механическом прокачивании воздуха через клиновидную щель в крышке, расположенной над вращающейся поверхностью питательной среды в чашке Петри. За 1 мин через узкую щель плексигласовой пластины просасывается 25 л воздуха, микробы из которого оседают на поверхность питательной среды в чашке Петри, при этом благодаря постоянному вращению чашки под входной щелью, микроорганизмы равномерно фиксируются по всех поверхности среды. В качестве питательной среды для определения микробного числа используется МПА, а для определения СПМ – кровяной агар. Большим преимуществом этого метода является возможность посева определенного объема воздуха.

После инкубации посева в термостате подсчитывают количество колоний и проводят расчет микробного числа по формуле:

х = -----------------, где а – количество выросших на чашке колоний;

VV– объем пропущенного воздуха через прибор, дм 3 ;

1000 – искомый объем воздуха, дм 3 .

Основные показатели санитарного состояния воздуха следующие:

Общее микробное число (ОМЧ) воздуха– количество колониеобразующих единиц (КОЕ) в 1 м 3 воздуха (подсчитывают колонии, вырастающие на поверхности питательного агара при посеве определенного объема воздуха и инкубации в течение 24 ч при 37 0 С и 24 ч при комнатной температуре.

Присутствие Staphylococcus aureus. В определенном объеме воздуха определяют наличие золотистого стафилококка (воздух засевают на желточно-солевой агар, где вырастают характерные колонии грамположительных кокков, обладающих ферментом плазмокоагулазлй).

Присутствие грибов. Определяют наличие в воздухе дрожжеподобных и плесневых грибов – подсчитывают количество колоний, вырастающих на среде Сабуро за 96 ч при 22-28 0 С.

Присутствие патогенных микроорганизмов. По эпидемиологическим показаниям в воздухе определяют наличие сальмонелл, микобактерий, вирусов.

Индекс санитарно-показательных микроорганизмов – количество золотистого стафилококка и гемолитических стрептококков в 1 м 3 воздуха. Эти бактерии являются представителями микрофлоры верхних дыхательных путей и имеют общий путь выделения с патогенными микроорганизмами, передающимися воздушно-капельным путем.

Ознакомиться с методами и объектами изучения санитарной микробиологии воздуха.

Научиться трактовать методы и способы забора проб воздуха закрытых помещений для определения СПМ.

Изучить основные СПМ воздуха закрытых помещений.

Научиться анализировать и оценивать допустимые уровни микробной обсемененности воздуха помещений.

Нормативы бактериальной обсемененности зависят от функционального назначения и класса чистоты помещений. Контролируют три вида санитарно­бактериологических показателей: до начала работы и во время работы.

1. Общее число микроорганизмов в 1 м Воздуха (КОЕ м)

2. Количество колоний Staphylococcus aureus в 1 м 3 воздуха

3. Количество плесневых и дрожжевых грибов в 1 дм воздуха

I. Особо чистые помещения (класс А): операционные, родильные залы, асептические боксы, палаты для недоношенных детей. Общая обсемененность воздуха до работы не должна превышать 200 микробов в 1м воздуха, во время работы - также не более 200. Стафилококков и микрогрибов не должно быть.

П. Чистые помещения (класс Б): процедурные, перевязочные, предоперационные, палаты реанимации, детские палаты. Общее количество микробов не должно превышать 500 в 1 м до начала работы, во время работы - не более 750/м .

III. Условно чистые (класс В): палаты хирургических отделений,

коридоры, примыкающие к операционным, родильным залам, боксы и палаты инфекционных отделений и др. Общее количество микробов не должно превышать 750/м 3 до начала работы, во время работы - не более 1000. Стафилококк золотистый и микрогрибы должны отсутствовать во всех помещениях классов А, Б и В как до начала, так и во время работы. IV. Грязные (класс Г): коридоры и помещения административных

зданий, лестницы, туалеты и пр. Микробная обсемененность не нормируется.

Гигиенические требования к отоплению и вентиляции.

Системы отопления, вентиляции и кондиционирования обеспечивают воздушно-тепловой режим больничных помещений.

Отопление.В лечебных учреждениях холодный период года система отопления должна обеспечивать равномерное нагревание воздуха в течение всего отопительного периода, исключать загрязнения вредными выделениями и неприятными запахами воздуха помещений, не создавать шума. Система отопления должна быть удобна в эксплуатации и ремонте, увязана с системами вентиляции, легко регулируема. Нагревательные приборы следует размещать у наружных стен под окнами, что обеспечивает их более высокую эффективность. В этом случае они создают равномерный обогрев воздуха в помещении и препятствуют появлению токов холодного воздуха над полом возле окон. Не допускается размещение в палатах нагревательных приборов у внутренних стен. Оптимальной системой является центральное отопление. Только вода с предельной температурой 85° допускается. Нагревательные приборы только с гладкой поверхностью разрешают в помещениях больниц. Приборы должны быть устойчивы к ежедневному воздействию моющих и дезинфицирующих растворов, не адсорбировать пыль и микроорганизмы.

Отопительные приборы в детских больницах ограждаются. Лучистый обогрев с гигиенической позиции более благоприятен, чем конвективный. Его применяют для обогрева операционных, предоперационных, реанимационных, наркозных, родовых, психиатрических отделений, а также палат интенсивной терапии и послеоперационных палат.

В качестве теплоносителя в системах центрального отопления лечебных учреждений используется вода с предельной температурой в нагревательных приборах 85°С. Использование других жидкостей и растворов в качестве теплоносителя в системах отопления лечебных учреждений запрещается.

Вентиляция.Здания лечебных учреждений должны быть оборудованы тремя системами:

- приточно-вытяжная вентиляция с механическим побуждением;

- естественная вытяжная вентиляция без механического побуждения;

Естественная вентиляция (аэрация) через форточки, фрамуги обязательна для всех лечебных помещений, кроме операционных.

Забор наружного воздуха для систем вентиляции и кондиционирования производят из чистой зоны атмосферного воздуха на высоте не менее 2 м от поверхности земли. Наружный воздух, подаваемый приточными установками, очищают фильтрами грубой и тонкой структуры.

Воздух, подаваемый в операционные, наркозные, родовые, реанимационные, послеоперационные палаты, палаты интенсивной терапии, а также в палаты для больных с ожогами, больных СПИДом, должен обрабатываться устройствами обеззараживания воздуха, обеспечивающими эффективность инактивации микроорганизмов и вирусов, находящихся в обрабатываемом воздухе, не менее 95%.

это комплекс мероприятий для создания и автоматического поддержания в помещения лечебных учреждений оптимального искусственного микроклимата и воздушной среды с заданными чистой, температурой, влажностью, ионным составом, подвижностью. Оно предусматривается в операционных, наркозных, родовых, послеоперационных палат, реанимационных, палатах интенсивной терапии, онкогематологических больных, больных СПИДом, с ожогами кожи, в палатах для грудных и новорожденных детей, а также во всех палатах отделений недоношенных и травмированных детей и других аналогичных лечебных учреждениях. Автоматическая система регулировки микроклимата должна обеспечивать требуемые параметры: температура воздуха - 15 - 25 °С, относительная влажность - 40 - 60%, подвижность - не более 0,15 м/сек.

Воздухообмен в палатах и отделениях должен быть организован так, чтобы максимально ограничить переток воздуха между палатными отделениями, между палатами, между смежными этажами. Количество приточного воздуха в палату должно составлять 80м /час на одного больного. Объем воздуха в палатах с минимальными размерами (7м - площадь, 3м -высота) составляет 21 м 3 на больного. Обеспечение достаточного нормируемого объема воздуха (80м в час) достигается 4-хкратной сменой воздуха в палате. Кратность воздухообмена - это сколько раз произойдет обмен воздуха в течение часа в помещении.

Архитектурно-планировочные решения стационара должны исключать перенос инфекций из палатных отделений и других помещений в операционный блок и другие помещения, требующие особой чистоты воздуха. Движение воздушных потоков должно быть обеспечено из операционных в прилегающие к ним помещения (предоперационные, наркозные и другие), а из этих помещений в коридор. В коридорах необходимо устройство вытяжной вентиляции. Это обеспечивается правильным соотношением притока и вытяжки.

Количество удаленного воздуха из нижней зоны операционных должно составлять 60%, из верхней зоны - 40%. Подача свежего воздуха осуществляется через верхнюю зону. При этом приток должен не менее чем на 20% преобладать над вытяжкой. Последнее требование распространяется на асептические палаты интенсивной терапии, послеоперационные палаты, реанимационные, родовые боксы, а также на палаты для недоношенных, грудных, новорожденных и травмированных детей. В то же время в палатах для туберкулезных больниц для взрослых больных вытяжка должна преобладать над притоком. Это предупреждает загрязнение коридора и других помещений палатной секции. В инфекционных, в том числе туберкулезных отделениях, вытяжная вентиляция с механическим побуждением устраивается из каждого бокса и полубокса и от каждой палатной секции отдельно, посредством индивидуальных каналов, исключающих перетекание воздуха по вертикали, они должны быть оборудованы устройствами обеззараживания воздуха.

Санитарно-микробиологическое исследование воздуха можно разделить на 4 этапа:

1. отбор проб;
2. обработка, транспортировка, хранение проб, получение концентрата микроорганизмов (если необходимо);
3. бактериологический посев, культивирование микроорганизмов;
4. идентификация выделенной культуры.

Отбор проб, как и при исследовании любого объекта, является наиболее ответственным. Правильное взятие проб гарантирует точность исследования. В закрытых помещениях точки отбора проб устанавливаются из расчета на каждые 20 м2 площади - одна проба воздуха, по типу конверта: 4 точки по углам комнаты (на расстоянии 0,5 м от стен) и 5-я точка - в центре. Пробы воздуха забираются на высоте 1,6—1,8 м от пола - на уровне дыхания в жилых помещениях. Пробы необходимо отбирать днем (в период активной деятельности человека), после влажной уборки и проветривания помещения. Атмосферный воздух исследуют в жилой зоне на уровне 0,5—2 м от земли вблизи источников загрязнения, а также в зеленых зонах (парки, сады и т.д.) для оценки их влияния на микрофлору воздуха. Для отбора воздуха на уровне 0,5-2м от земли используют специальные штативы.

Следует обратить внимание на то, что при отборе проб воздуха во многих случаях происходит посев его на питательную среду.

Седиментационный - наиболее старый метод, широко распространен благодаря простоте и доступности, однако является неточным. Метод предложен Р. Кохом и заключается в способности микроорганизмов под действием силы тяжести и под влиянием движения воздуха (вместе с частицами пыли и капельками аэрозоля) оседать на поверхность питательной среды в открытые чашки Петри. Чашки устанавливаются в точках отбора на горизонтальной поверхности. При определении общей микробной обсемененности чашки с мясопептонным агаром оставляют открытыми на 5—10 мин или дольше в зависимости от степени предполагаемого бактериального загрязнения. Для выявления санитарно-показательных микробов применяют среду Гарро или Туржецкого (для обнаружения стрептококков), молочно-солевой или желточно-солевой агар (для определения стафилококков), суслоагар или среду Сабуро (для выявления дрожжей и грибов). При определении санитарно- показательных микроорганизмов чашки оставляют открытыми в течение 40—60 мин.

По окончании экспозиции все чашки закрывают, помещают в анаэростат или термостат для культивирования в оптимальной для развития выделяемого микроорганизма среде, затем (если этого требуют исследования) на 48 ч оставляют при комнатной температуре для образования пигмента пигментообразующими микроорганизмами.

Седиментационный метод имеет ряд недостатков: на поверхность среды оседают только грубодисперсные фракции аэрозоля; нередко колонии образуются не из единичной клетки, а из скопления микробов; на применяемых питательных средах вырастает только часть воздушной микрофлоры. К тому же этот метод совершенно непригоден при исследовании бактериальной загрязненности атмосферного воздуха.

Более совершенными методами являются аспирационные, основанные на принудительном осаждении микроорганизмов из воздуха на поверхность плотной питательной среды или в улавливающую жидкость (мясо-пептонный бульон, буферный раствор, изотонический раствор хлорида натрия и др.). В практике санитарной службы при аспирационном взятии проб используются аппарат Кротова, пробоотборное устройство ПУ-1Б, бактериоуловитель Речменского, прибор для отбора проб воздуха (ПОВ-1), пробоотборник аэрозольный бактериологический (ПАБ-1), бактериально-вирусный электропреципитатор (БВЭП-1), прибор Киктенко, приборы Андерсена, Дьяконова, МБ и др. Для исследования атмосферы могут быть использованы и мембранные фильтры № 4, через которые воздух просасывается с помощью аппарата Зейтца. Большое разнообразие приборов свидетельствует об отсутствии универсального аппарата и о большей или меньшей степени их несовершенства.

Пробоотборное устройство ПУ-1Б. В настоящее время этот прибор широко применяется при исследовании воздуха закрытых помещений и имеется в лабораториях СЭС.

Принцип работы ПУ-1Б основан на том, что воздух, просасываемый через отверстия в крышке аппарата, ударяется о поверхность питательной среды, при этом частицы пыли и аэрозоля прилипают к среде, а вместе с ними и микроорганизмы, находящиеся в воздухе. Чашку Петри с тонким слоем среды укрепляют на вращающемся столике аппарата, что обеспечивает равномерное распределение бактерий на ее поверхности. Работает аппарат от электросети. После отбора пробы с определенной экспозицией чашку вынимают, закрывают крышкой и помещают на 48 ч в термостат. Обычно отбор проб проводят со скоростью 200 л/мин в течение 0,5-5 мин. Таким образом, определяется флора в 100-1000 л воздуха.

Приемник перед забором пробы воздуха заполняется 3—5 мл улавливающей жидкости (водой, мясопептонным бульоном, изотоническим раствором хлорида натрия).

Пробоотборник аэрозольный бактериологический (ПАБ-1) (в настоящее время снят с производства). Механизм действия ПАБ-1 основан на принципе электростатического осаждения частиц аэрозоля (а следовательно, и микроорганизмов) из воздуха при прохождении его через прибор, в котором эти частицы получают электрический заряд и осаждаются на электродах с противоположным знаком. На электродах для улавливания аэрозолей помещают в горизонтальном положении металлические поддоны с твердыми средами в чашках Петри или жидкой питательной средой (15—20 мл). Прибор переносной с большой производительностью 150-250 л/мин, т.е. за 1 ч можно отобрать 5—6 м3 воздуха. Его рекомендуют применять для исследования больших объемов воздуха при обнаружении условно-патогенных и патогенных микроорганизмов, например, при выявлении в воздухе палат больниц возбудителей внутрибольничных инфекций (Pseudomonas aeruginosa. Staph, aureus и др.), определении сальмонелл и эшерихий в атмосферном воздухе в местах дождевания при орошении земледельческих полей сточными водами.

При использовании любого из перечисленных приборов получаемые результаты являются приблизительными, однако они дают более правильную оценку обсемененности воздуха в сравнении с седиментационным методом. Поскольку и отбор и санитарно-микробиологические исследования воздуха не регламентированы ГОСТ, то можно использовать любой прибор для оценки бактериальной загрязненности воздуха. Во многих случаях отбор проб совмещен с этапом посева.

Для снижения численности микроорганизмов в воздухе закрытых помещений применяют следующие средства:

1. химические - обработка озоном, двуокисью азота, распыление молочной кислоты,
   
2. механические - пропускание воздуха через специальные фильтры,
3. физические - ультрафиолетовое облучение.

Определение общей численности сапрофитных бактерий

Общая бактериальная обсемененность воздуха или микробное число - это суммарное количество микроорганизмов, содержащихся в 1 м3 воздуха. Для определения общего количества бактерий в воздухе закрытых помещений забирают две пробы (объемом по 100 л каждая) на чашки Петри с МПА при помощи Пу-1Б, либо седиментационным методом, расставляя чашки с питательной средой по принципу конверта. Чашки с посевом помещают в термостат на сутки, а затем на 48 ч оставляют при комнатной температуре. Экспозиция чашек с посевами на свету дает возможность подсчитать раздельно количество пигментных колоний (желтых, белых, розовых, черных, оранжевых и др.), количество спорообразующих бацилл, грибов и актиномицетов.

Подсчитывают количество колоний на обеих чашках, вычисляют среднее арифметическое и делают перерасчет на количество микроорганизмов в 1 м3 воздуха. Бациллы образуют колонии, как правило, крупные, круглые, с неровными краями, сухие, морщинистые. Колонии грибов с пушистым налетом (Мисог и Aspergillus) и плотные - зеленоватые или сероватые (Penicillium). Актиномицеты образуют беловатые колонии, вросшие в агар. Количество каждой группы колоний (пигментных, беспигментных, плесеней, бацилл, актиномицетов) выражают в процентах по отношению к общему числу.

При определении микробного числа методом седиментации по Коху подсчитываются колонии, выросшие на МПА в чашках Петри, и расчет ведется по B.Л. Омелянскому. Если придерживаться этой методики, на чашку площадью 100 см2 за 5 мин оседает такое количество микробов, которое содержится в 10 л воздуха.

Стафилококки являются одним из наиболее распространенных микроорганизмов в воздухе закрытых помещений, что обусловливается значительной устойчивостью их к различным факторам окружающей среды. Обнаружение патогенных стафилококков в воздухе закрытых помещений имеет санитарно-показательное значение и свидетельствует об эпидемическом неблагополучии. Отбор проб воздуха проводится в количестве 250 л на 2—3 чашки с молочно-желточно-солевым агаром (или молочно- солевым, желточно-солевым) и на чашку с кровяным агаром. Чашки инкубируют при температуре 37°С в течение 48 ч. Изучают культуральные признаки всех видов колоний, из подозрительных готовят мазки и окрашивают по Граму.

Помимо качественной характеристики отдельных колоний, подсчитывают количество выросших колоний стафилококков в 1 м3 воздуха.

Стрептококки также являются санитарно-показательными микроорганизмами воздуха, в который они попадают от больных скарлатиной, тонзиллитами, ангиной и носителей стрептококков. Отбор проб воздуха при исследовании на наличие а- и р-гемолитических стрептококков производят на чашки с кровяным агаром, средами Гарро и Туржецкого. Забирают 200—250 л воздуха, чашки с посевами выдерживают в термостате 18—24 ч и затем еще 48 ч при комнатной температуре (после предварительного просмотра и учета). Идентификацию проводят по общепринятой методике.

Определение патогенных микроорганизмов в воздухе

Ввиду малой концентрации патогенных микроорганизмов в воздухе закрытых помещений, их выделение является достаточно трудной задачей.

При расшифровке внутрибольничных инфекций определяют в воздухе присутствие стафилококков, стрептококков, синегнойной палочки, сальмонелл, протеев и др. Отбор проб воздуха производят в объеме не менее 1000 л. Посев производят на соответствующие элективные среды. Если используется жидкая среда как улавливающая жидкость, то пробирку с жидкостью помещают в термостат на сутки для подращивания (получение накопительной культуры), а затем высевают на элективную среду.

При исследовании воздуха на наличие микобактерий туберкулеза отбор проб производят в объеме 250—500 л воздуха. В качестве улавливающей жидкости берут среду Школьниковой, которую затем обрабатывают 3% раствором серной кислоты (для подавления сопутствующей микрофлоры) и центрифугируют. Осадок засевают в пробирки на одну из яичных сред, чаще среду Левенштейна - Иенсена. Инкубируют при 37°С до 3 мес. Отсутствие роста в течение 3 мес дает возможность выдать отрицательный ответ. Пробирки первый раз просматривают через 3 нед, затем каждые 10 дней. Выделенную культуру идентифицируют, определяют ее вирулентность (заражением морских свинок - биопроба) и при необходимости определяют устойчивость к лекарственным препаратам.

При определении в воздухе коринебактерий дифтерии для посева воздуха используют чашки со средой Клауберга.

В последние годы определяют в атмосферном воздухе в районах дождевания земледельческих полей, при орошении их сточными водами, сальмонеллы в случае появления заболевания среди персонала станций орошения или населения. Отбор проб производят с помощью аспиратора ПУ-1Б на чашки с висмут-сульфитным агаром. Исследуют не менее 200 л воздуха. Выделенная культура идентифицируется по обычной схеме определения сальмонелл.

В связи с развитием микробиологической промышленности возникла необходимость исследования воздуха с целью обнаружения грибов-продуцентов при производстве антибиотиков, ферментных препаратов, при изготовлении кормовых дрожжей и др. Для исследования воздуха на плесневые грибы рода Candida отбор проб производят в объеме от 100 до 1000 л на чашки со средой Чапека, суслоагаром (для обнаружения плесневых грибов) и с метабисульфит-натрий- агаром (МБС-агар) с добавлением антибиотиков (для обнаружения дрожжеподобных грибов рода Candida). Чашки инкубируют в термостате при температуре 26—27°С в течение 3—4 сут (для плесневых грибов) и при 35—37°С в течение 2—3 сут (для грибов - продуцентов и дрожжеподобных рода Candida). Идентификация проводится с учетом особенностей плодоносящих гиф и характера мицелия. Считают, что концентрация дрожжеподобных грибов в количестве 500—600 клеток в 1 м3 воздуха рабочего помещения является предельной, превышение ее ведет к развитию аллергических реакций у рабочих.

МАЙСТРЕНКО Евгений Валерьевич — врач-эпидемиолог

Инфекции, вызываемые патогенным стафилококком, относятся к особой группе. Являясь условно-патогенным микроорганизмом, стафилококк широко распространен в окружающей нас среде и практически всегда присутствует на теле человека. При определенных обстоятельствах данный микроорганизм может давать воспалительный процесс практически любой системы и любого органа – кожи и подкожной клетчатки, внутренних органов, нервной ткани, мозга и сердца.

Стафилококк имеет большее количество штаммов (27), наиболее распространенными и патогенными из которых являются золотистый, эпидермальный, сапрофитный и гемолитический стафилококк.

В зависимости от вида стафилококка наиболее часто поражаются те или иные органы и системы человека:

сапрофитный стафилококк – наименее патогенен, чаще всего поражает мочеполовую систему (циститы, нефриты);

эпидермальный стафилококк — может обитать на всех слизистых оболочках и любых участках кожи. Является составляющей нормальной резидентной микрофлоры кожи рук. При нормальном иммунитете в организме не возникает каких либо патологических изменений. При нарушении защитных сил организма, попадании в кровоток при травмах, проведении оперативных вмешательств может проявляться в виде воспалительных заболеваний сердца (эндокардитов);

золотистый стафилококк — наиболее опасен и может вызывать более сотни различных воспалительных заболеваний любых органов и систем человеческого организма, таких как риниты, фарингиты, синуситы, поражения кожи (пиодермии, абсцессы, флегмоны), бронхиты, пневмонии, поражения мозга (абсцессы, гнойный менингит, тромбофлебит вен мозга), костной ткани (остеомиелиты, гнойные артриты), а также стафилококковые маститы, эндокардиты, пиелонефриты, стафилококковый сепсис, пищевые отравления.

Особую актуальность имеет развитие стафилококковой инфекции в стационаре. Проведенный в хирургических отделениях Шестой городской больнице сравнительный анализ высеваемости патогенного стафилококка за январь-июль 2015 и 2016 года из внешней среды стационара и при бак.посевах из ран пациентов показывает увеличение удельного количества стафилококковий инфекции с 12,9% до 21%. Статистические данные подтверждают, что около 80% гнойно-воспалительных инфекций связаны с условно-патогенными микроорганизмами, значительная часть которых приходится на стафилококковую инфекцию.

Основными факторами возникновения и распространения стафилококковой инфекции среди пациентов и персонала лечебного учреждения считают:

— снижение иммунитетета у пациентов вследствии различных заболеваний, с которыми они находятся на стационарном лечении, хронических патологий, применения сильных медикаментов, иммунодепрессантов,

— условия нахождения в стационаре (постоянный тесный контакт с пациентами, посетителями и персоналом, пользование общими вещами и предметами гигиены и т.д.);

— высокая устойчивость возбудителя во внешней среде;

— множественность путей распространения инфекции (контактно-бытовой, воздушно-капельный, пылевой, фекально-оральный, через нестерильный медицинский инструментарий);

— большое количество бессимптомных носителей золотистого стафилококка как среди больных и их посетителей, так и среди персонала больницы (согласно статистическим данным до 40% людей, так или иначе, инфицированы стафилококком).

Внутрибольничные штаммы патогенного стафилококка особенно опасны тем, что они наиболее агрессивны, крайне заразны и зачастую имеют множественную резистентность к антибактериальным препаратам.

Мероприятия по профилактике стафилококковой инфекции направлены на предотвращение заражения пациента от больного или бактерионосителя данной инфекции. Наиболее важным является определение источника возбудителя. Законодательством предусматривается обязательные бактериологические исследования персонала лечебного учреждения при прохождении медицинских осмотров, в плановом порядке, а также пациентов при неблагополучной эпидемической ситуации. Высевание патогенного стафилококка при бактериологических исследованиях клинических изолятов от больных безусловно требует проведения бактериологического контроля всех возможных источников стафилококковой инфекции. При установлении фактов наличия патогенного стафилококка предусматривается временное отстранение от работы и другой деятельности, если это может привести к распространению данной инфекции и обязательное лечение до избавления от стафилококковой инфекции.

Не менее важной составляющей профилактики в лечебном учреждении является воздействие на пути передачи инфекции: обязательное ношение защитных масок, регулярное проведение влажной уборки помещений с применением дезинфекционных средств, проветривание помещений, своевременная смена и стирка постельного белья, гигиеническая обработка рук и использование стерильных инструментов, перевязочного материала и оборудования медицинским персоналом.

Личная профилактика предусматривает соблюдение правил личной гигиены: следить за чистотой тела и рук, пользоваться индивидуальными предметами обихода и личной гигиены, употреблять доброкачественную чистую воду и пищу с достаточной термической обработкой и соблюдением условий ее хранения.

В индивидуальном плане важно своевременное устранение возможных очагов инфекции в организме, таких как кариесные зубы, неудаленные корни зубов, хронические воспаление миндалин и аденоидов, коньюктивиты, фурункулы, ячмени, воспалительные заболевания половой сферы и мочевыводящих путей. Важно не допускать переохлаждения организма, своевременно обрабатывать раны и царапины антисептическими средствами.

Существует специфическая активная и пассивная иммунопрофилактика в виде применения противостафилококкового анатоксина и иммуноглобулинов, а также может использоваться неспецифическая иммунопрофилактика в лечении данной инфекции путем введения плазмы, аутогемотерапии.

В медицинской практике принято выделять 4 степени стафилококка. При этом, каждая из которых характеризуется определенной степенью активности и требует различного лечения. При этом основное значение имеет патогенность того, или иного вида стафилококка, состояние иммунитета инфицированного и его резистентность к бактерии. При обнаружении у пациента 1-2 степени стафилококка антимикробная терапия обычно не назначается. В более сложных случаях 3-4 степени вместе с мероприятиями на повышение иммунитета, устранения возможного дисбатериоза и авитаминоза назначается антибиотикотерапия. В случае не назначения или неэффективности назначенных антибактериальных средств могут возникнуть серьезные осложнения стафилококковой инфекции, такие как эндокардит, менингит, синдром токсического шока, сепсис. Необходимо отметить, что стафилококковый сепсис считается самым распространенным среди других видов сепсиса и наиболее опасным. При этом несвоевременность и/или неэффективность антибактериальной терапии при указанном заболевании часто приводит к высокой смертности.

При назначении антибиотических средств необходимо учитывать индивидуальные особенности и стадию протекания болезни, а также свойства назначаемого препарата, основными из которых, являются, прежде всего чувствительность к нему стафилококка, способность проникать в органы и ткани, создавая там необходимую терапевтическую концентрацию, его токсичность для организма пациента. Выбирая тот или иной антибиотик также необходимо учитывать анализ данных микробиологического мониторинга, проводимого в конкретном лечебном учреждении, с рекомендациями по неприменению антибактериальных средств, к действию которых устойчивы 25% и более высеянных в стационаре микроорганизмов, в соответствии с требованиями п. 5.3.приказа МОЗ Украины от 04.04.2012 № 236.

Подтверждением эффективности назначаемого препарата, конечно же, является лабораторное определение чувствительности высеянного штамма стафилококка из биологического материала конкретного больного с антибиотикограммой.

Последние два действия при выборе антибиотика крайне важны для предотвращения развития антибиотикорезистентности микрофлоры в больнице.

Для лечения стафилококковых инфекций, как и в случае гнойно-воспалительных заболеваний, вызванных другими патогенными возбудителями, наряду с хирургическим вскрытием гнойных ран и абсцессов с их промыванием антибактериальными средствами и дренированием, применяют современные антибиотики нового поколения.

аминогликозиды: гентамицин (чувствительность в 92,3% случаях);

гликопептиды: ванкомицин (94,8%);

линкозамиды: клиндамицин (94,4%), линкомицин (87,5%);

фторхинолоны: левофлоксацин (86,4%), ципрофлоксацин (60%);

полусинтетические пенициллины: оксациллин (87,9%);

макролиды: эритромицин (71,2%);

тетрациклины: доксициклин (100%);

оксазолидины: линезолид (97,5%);

других групп: рифампин (94,1%).

По результатам проводимых бактериологической лабораторией тестирования на чувствительность к стафилококку антимикробных препаратов не рекомендуется назначать: пенициллин (чувствительность лишь в 25% случаях), а также антибиотики цефалоспоринового ряда, таких как цефтазидим, цефепим, цефтриаксон, цефокситин, цефоперазон/сульбактам (резистентность к которым составляет 25% и выше всей высеянной микрофлоры в стационаре).

При выборе препарата той или иной группы рекомендуется проконсультироваться с госпитальным эпидемиологом или другим специалистом по инфекционному контролю.