Транспортные среды для дифтерии

Требования
к отбору и транспортированию материала для бактериологической диагностики дифтерии

Взятие, транспортировку и бактериологическое исследование на дифтерийную инфекцию проводится согласно нормативным и методическим документам по лабораторной диагностике дифтерии. Эффективность проведения бактериологического исследования зависит от своевременного правильного взятия материала и соблюдения сроков доставки его в бактериологическую лабораторию.

Медицинским работникам медицинских организаций, ответственным за взятие и транспортировку материала при обследовании на дифтерию, следует согласовывать методику взятия материала, условия транспортировки и возможности применения транспортной среды с врачами-бактериологами, проводящими эти исследования.

Для взятия материала используются стерильные сухие ватные (или дакроновые) тампоны, также возможно их приготовление в лабораторных условиях с учетом требований нормативно-методической документации. Материал из ротоглотки и носа берется отдельными тампонами, натощак или не ранее, чем через 2 часа после еды, до применения полоскания или других видов лечения. Взятие материала осуществляется при хорошем освещении, с использованием шпателя, не касаясь тампоном языка и внутренних поверхностей щек и зубов. Одним тампоном собирают материал с участков ротоглотки - миндалин, дужек мягкого неба, небного язычка, при необходимости - с задней стенки глотки. При наличии налетов, патологический материал следует брать с границы пораженных и здоровых тканей, слегка нажимая на них тампоном. Для взятия материала из носа используется другой тампон, который вводят глубоко сначала в один, а потом в другой носовой ход, собирая материал со стенок и перегородки носа, при этом не касаясь крыльев носа снаружи.

При дифтерии других локализаций (глаза, уши, кожа, раны, гениталии) помимо материала из пораженных участков забирается материал из ротоглотки и носа. При показаниях к обследованию на дифтерию и одновременном наличии пораженных слизистых и кожи в углу рта ("заеды") обследование этих участков проводится отдельным тампоном и параллельно берется материал из ротоглотки и носа.

При прямой ларингоскопии материал (слизь, пленка) собирается непосредственно из гортани. В случаях оперативного вмешательства для бактериологического исследования следует брать слизь из интубационной трахеотомической трубки, а также пленки, измельченные при операции.

При исследовании на дифтерию пораженного участка кожи, необходимо протереть его поверхность промокательными движениями стерильной марлевой салфеткой или тампоном, смоченными стерильным физиологическим раствором, осторожно приподнять или отодвинуть струпы и корочки. После этого тампоном, предназначенным для взятия материала на дифтерию, взять секрет с пораженного участка. Одновременно забирают материал из ротоглотки и носа.

При постмортальном исследовании для выявления возбудителя дифтерии материал следует брать с миндалин, гортани и полости носа (слизь, пленки), при редких локализациях - с конъюнктивы, слизистой гениталий, пищевода и желудка. Учитывая, что дифтерия является токсикоинфекцией, другие органы (сердце, печень и пр.) обследуют только для выявления токсических поражений.

Тампоны должны быть доставлены в лабораторию не позднее чем через 3 часа после взятия материала. В холодное время года для предотвращения замерзания исследуемый материал доставляется в бактериологическую лабораторию в сумках-термосах.

При невозможности доставки исследуемого материала в баклабораторию в установленные сроки (не позднее 3-х часов) или проведении обследования во второй половине дня, материал из ротоглотки (зев) и носа засевают "площадкой" с последующим рассевом на чашку Петри с питательной средой, разделенной пополам ("чашечный метод"). При этом одна половина чашки Петри предназначена для материала из ротоглотки, другая - для материала из носа. Затем посевы помещают в термостат при 37°С до утра следующего дня, после чего доставляют в сумках-термосах в баклабораторию (с указанием времени посева материала). При редких локализациях посев материала из каждого пораженного участка осуществляется на отдельную чашку Петри с питательной средой. Медицинский персонал, осуществляющий забор, транспортировку и посев материала должен проходить инструктаж в баклаборатории о правилах взятия и посева материала на питательные среды.

При невозможности организовать посев материала "чашечным методом" допускается засевать материал в пробирки с транспортной средой для сохранения и подращивания возбудителя дифтерии, которая готовится в лабораторных условиях согласно нормативно-методической документации. Не допускается использование коммерческих транспортных сред, предназначенных для исследования на микрофлору ротоглотки и носа, в связи с тем, что состав этих сред не удовлетворяет условиям культивирования возбудителя дифтерийной инфекции, что приводит к потере патологического материала.

В случае использования транспортной среды, приготовленной в лабораторных условиях согласно нормативной документации, материал собирается сухим тампоном, опускают в пробирку со средой и следят за тем, чтобы пробка тампона не намокала. Следует учитывать, что применение транспортной среды увеличивает срок выдачи окончательного ответа на одни сутки, так как после подращивания в термостате при 37°С на утро следующего дня материал доставляется в баклабораторию для последующего посева на чашки Петри с селективной питательной средой.

Незасеянные (чистые) чашки Петри с селективной питательной средой и пробирки с транспортной средой доставляются в медицинские организации (далее - МО) из баклабораторий. Хранение питательных сред в МО осуществляется в холодильнике при 4 - 6°С чашки со средой - не более трех дней; пробирки с транспортной средой - не более 10 дней. Перед взятием и посевом материала их необходимо достать из холодильника и согреть до комнатной температуры. При невозможности доставки материала в баклабораторию круглосуточно МО оснащаются термостатами.

В стационаре взятие патологического материала проводят круглосуточно, используя "чашечный метод".

Исследуемый материал из ротоглотки и носа, собранный сухими ватными тампонами и помещенный в пробирки (не менее двух пробирок от одного лица, при редких локализациях добавляются дополнительные пробирки), или материал, засеянный в пробирки с транспортной средой (также не менее двух пробирок от одного лица) или материал из ротоглотки и носа, а также из мест редких локализаций, засеянный "чашечным методом", должен быть четко пронумерован и иметь сопроводительную документацию. Пробирки с материалом от одного лица скреплены вместе.

В сопроводительном документе указывается: фамилия, имя, отчество (при наличии), возраст, адрес места жительства обследуемого лица, название учреждения, направляющего материал, локализацию взятого материала (нос, зев, кожа и другие), дата и время взятия материала, цель обследования (диагностическая с указанием диагноза, по эпидпоказаниям, с профилактической целью).

Медицинские работники МО, допущенные к взятию и посеву материала, проходят инструктаж не реже 1 раза в год в баклаборатории, осуществляющей исследования на дифтерию. Врачи-бактериологи повышают квалификацию на курсах тематического усовершенствования по лабораторной диагностике дифтерии не реже 1 раза в три года.

Все о диагностике дифтерии

Микробиологическая диагностика дифтерии
Серологическая диагностика дифтерии
Диагностика дифтерии с помощью иммунофлуоресцентного анализа
Диагностика дифтерии с помощью полимеразной цепной реакции (ПЦР)
Диагностика осложнений при дифтерии
Проба Шика

Диагностика дифтерии основана на клинических данных с последующим подтверждением диагноза бактериологическим исследованием. Лабораторная диагностика дифтерии включает в себя ряд исследований, основным из которых является микробиологическое.

Зачастую для постановки диагноза бывает достаточно тщательно собранного анамнеза заболевания и осмотра ротоглотки. Всякая задержка при установлении диагноза и назначения адекватного лечения увеличивает вероятность неблагоприятного исхода заболевания.
Выделение культуры возбудителей с последующим определением у выделенных возбудителей токсикогенности является основным и единственным методом микробиологической диагностики дифтерии. Предварительный результат получается через 24 часа, через 48 часов получается результат исследования дифтерийных палочек на токсикогенность, через 72 часа определяется биовар возбудителя.
Микроскопическое исследование при дифтерии нерационально.
Серологическая диагностика основана на определении роста титра антибактериальных антител. Результаты получаются на 2-й неделе заболевания.
При диагностике дифтерии применяется генетический метод (ПЦР), позволяющий определить ДНК бактерий.
Реакция латекс агглютинации относится к экспресс-методам. Результат получается уже через два часа.
Иммунофлуоресцентный анализ результативен. Однако его проведение должно осуществляться только высококвалифицированным персоналом.

Микробиологическое исследование является основным методом лабораторной диагностики дифтерии.

Бактериологическое исследование проводится в следующих случаях:

с целью диагностики дифтерии зева, носа и глотки у взрослых и детей,
с целью выявления возможного бактерионосительства у лиц, которые поступают в детские дошкольные учреждения и специализированные учреждения для взрослых,
с целью выявления заболевания среди контактирующих лиц.

Материал для исследования (мазок на дифтерию) собирается натощак или спустя 2 часа после еды. Для исследования используются дифтерийные пленки или кусочки тканей, расположенных по соседству, отделяемое из мест поражения и носоглоточная слизь.

Для избавления от паразитов наши читатели успешно используют Intoxic. Видя, такую популярность этого средства мы решили предложить его и вашему вниманию.
Подробнее здесь…

Забор материала (мазок на дифтерию) осуществляется ватным тампоном. Корень языка прижимается шпателем. Ватным тампоном необходимо коснуться слизистой оболочки миндалин на границе пленки, дужек и задней стенки глотки. Далее тампон опускается в стерильную пробирку, не касаясь ее стенок.

В течение первых 3-х часов должен быть отправлен в лабораторию. При невозможности произвести посев в ближайшие 3 — 4 часа, забор материала осуществляется стерильным ватным тампоном, который смачивают в 5% растворе глицерина в изотоническом растворе хлорида натрия или 2% растворе теллурита калия.

Забор материала (мазок на дифтерию) осуществляется двумя ватными тампонами, один из которых используется для посева, другой — для микроскопии.

При подозрении на дифтерию необходимо оповестить сотрудников лаборатории, чтобы собранный материал был посеян на соответствующие среды (кровяной агар, среда Леффлера или теллуритовая среда).

Посев осуществляется на питательные среды (кровяной агар, среда Леффлера или теллуритовая среда). Теллурит в большой концентрации подавляет рост сопутствующей микрофлоры.

При росте бактерий на кровяном агаре колонии приобретают беловатую окраску, они непрозрачные, округлые, выпуклой формы, 1 — 2 мм в диаметре, чаще маслянистой консистенции.

При росте бактерий на теллуритовых средах колонии серого цвета, выпуклые, края ровные. Через двое суток колонии приобретают темно-серый или черный цвет, они имеют металлический блеск, ровные или фестончатые края, поверхность гладкая или радиально исчерчена.

Принимая во внимание ферментативные признаки возбудителей и структуру колоний при росте на теллуритовых средах, выделяют 4 биотипа коринебактерий дифтерии: Corynebacterium diphtheriae gravis, Corynebacterium diphtheriae mittis, Corynebacterium diphtheriae intermedius и Corynebacterium diphtheriae belfanti.

Токсикогенность возбудителей дифтерии определяется после выделения культуры бактерий. Для этих целей используется методика диффузной преципитации в геле и методика определения токсикогенности бактерий в живом организме (на морских свинках).

Лабораторная диагностика с применением микроскопии является второстепенным по значимости. Ввиду того, что возбудители дифтерии плохо впитывают красители, окраска по Граму считается не специфичной, однако она позволяет косвенно определить непатогенные коринебактерии, которые в мазке располагаются параллельно друг другу.

При окраске по Нейссеру выявляются характерные для дифтерийных палочек зерна Бабеша-Эрнста, которые располагаются на полюсах клеток, придавая им вид булавы.

В мазках патогенные дифтерийные палочки располагаются под углом друг к другу.

Для выявления зерен Бабеша-Эрнста применяется методика люминесцентной микроскопии. При окрашивании мазков корифосфином в микроскопе можно увидеть желто-зеленые тела бактериальных клеток с оранжево красными зернами волютина.

Серологические исследования позволяют обнаружить антибактериальные и антитоксические антитела. Значимым является обнаружение антибактериальных антител, так как содержание антитоксина изменяется в связи с применением с первых дней антитоксической сыворотки. Наиболее распространенными в настоящее время является реакция пассивной гемагглютинации (РНГА и РПГА).

Иммуноглобулины G и M говорят об остроте инфекционного процесса.

Иммуноглобулины G говорят о недавно перенесенном заболевании.

Иммуноглобулины М говорят об остропротекающей дифтерии.

При дифтерии титр антител со временем повышается. Понижение концентрации антител свидетельствует о выздоровлении больного.

Противодифтерийные антитела образуются после вакцинации. В крови привитого человека они циркулируют многие годы.

Благодаря применению методики флуоресцирующих антител стало возможным проведение качественного и количественного анализа внутриклеточных и поверхностных антигенов в образцах клеточных суспензий. Антигены визуализируются с помощью специфических антител с флуоресцентными маркерами. Использование данной методики доверяется только высококвалифицированному персоналу.

Методика ПЦР применяется для раннего выявления дифтерийных палочек, подтверждения диагноза и в случаях атипичной ангины. Обнаружение гена токсикогенности методом ПЦР является наиболее быстрым и надежным методом лабораторной диагностики дифтерии.

При токсическом поражении сердечной мышцы отмечаются изменения на электрокардиограмме, фонокардиограмме и УЗИ сердца. Исследуется активность целого ряда ферментов (лактатдегодрогиназа, креатинфосфокиназа, аспартатаминотрансфераза).
Поражение почек при дифтерии проявляется в виде токсического нефроза. При подозрении на это осложнение производится общий анализ крови и мочи, биохимические исследования (определение креатинина, мочевины, остаточного азота), производится УЗИ почек.
Токсическое поражение печени протекает с явлениями гипогликемии (снижение уровня глюкозы в крови) и глюкозурии (наличие глюкозы в моче).
Развитие анемии связано с гемолизом эритроцитов.

Наличие или отсутствие противодифтерийного иммунитета устанавливается при помощи внутрикожной пробы Шика, которая проводится с дифтерийным токсином.

В случае отрицательной реакции говорят о невосприимчивости к дифтерии. Реакцию Шика сегодня используют только по эпидпоказаниям. На ее проведение уходит несколько дней. Однако несмотря на это она помогает определить степень восприимчивости к дифтерии лиц, находившихся в контакте с больным и уточнить их иммунный статус.

Глисты у ребенка: симптомы, признаки и как определить глистов (Комаровский)

Специалисты говорят о том, что глисты у детей в школьных и дошкольных коллективах встречаются почти в 80% процентов случаев.

Неверные стереотипы
Чем опасны глисты?
Виды гельминтов
Как заражаются глистами
Причины появления глистов
Симптомы гельминтозной инвазии
Последствия гельминтозов
Глисты и прививки
Что делать при подозрении на гельминты

Еще до года, когда ребенок активно познает мир, пробуя все на вкус, невозможно избежать контакта с множеством бытовых предметов, несущих потенциальную опасность. Рискованным периодом в плане заражения ребенка инфекцией является летне —осенняя пора, изобилующая фруктами и овощами, связанная с играми в песочнице и во дворе.

Чтобы заподозрить глисты у детей и своевременно начать лечение, нужно знать основные симптомы заражения ими. Любое промедление в устранении глистной инвазии может серьезно отразиться на здоровье малыша в будущем. Глисты, говорит Комаровский, не такие уж и безобидные паразиты, как кажется с первого взгляда.

Безусловно, низкая культура гигиены – одна из основных причин паразитарных болезней. Некоторые ошибочно считают, что глисты – признак родительской небрежности. Ссылаясь на мировую медицинскую статистику, Комаровский опровергает это. Опасность заражения глистами велика в семьях, где строго следуют основным гигиеническим правилам. Дело в том, что определить симптомы начальной стадии заболевания затруднительно. Поставить точный диагноз в таком случае сложно даже для опытного специалиста. Жить в организме хозяина глисты, или нематоды по-научному, способны годами, даже десятилетиями. При малейшем нарушении иммунитета они активизируются с новой силой.

Во время обитания в организме ребенка паразиты выделяют агрессивные токсины, нарушающие работу всех внутренних органов. Аллергия и тяжелая интоксикация – далеко не все проявления глистной инвазии. Глисты лишают развивающийся организм жизненно необходимых витаминов и микроэлементов. Их дефицит влечет за собой угнетение иммунитета и вторичное присоединение инфекций. Общее истощение организма ребенка, его астенизация существенно снижают работоспособность. Нарушения сна и эмоциональная лабильность провоцируют психические расстройства у детей.

Детский врач Евгений Олегович Комаровский говорит, что в подавляющем большинстве у детей встречаются три основных вида гельминтов:

Самыми распространенными гельминтозами у человека медики называют аскаридоз и энтеробиоз.

При энтеробиозе острицы населяют нижние отделы толстого кишечника. Это мелкие черви до одного сантиметра в длину.

Аскариды – возбудители аскаридоза, достигают двадцати сантиметров в длину. Повреждая стенки кишечника при миграции, они могут вызывать кровотечения.

Чаще всего заражение глистами происходит через почву, зараженную испражнениями инфицированных животных.

Переносчиками паразитов могут выступать мухи, которые переносят яйца глистов на продукты питания.

Ненамеренное заглатывание воды из загрязненных водоемов также может выступать в роли фактора инфицирования у детей.

Нельзя забывать о домашних и дворовых животных, которые зачастую являются промежуточными хозяевами глистов.

Комаровский выделяет три основных способа заражения гельминтами:

от человека к человеку, характерно для остриц;
фекально-оральный способ, который используют геогельминты – паразиты, обитающие в земле;
алиментарный путь, с помощью которого глисты попадают с пищей в организм ребенка.

Особое внимание доктор Комаровский уделяет заболеваемости среди беременных женщин. Проникая в органы плода сквозь оболочки плаценты, гельминты могут вызывать различные нарушения со стороны легких, печени, мышц и головного мозга новорожденного.

Безусловно, природа предусмотрела защитные барьеры на пути паразитов, к ним относят:

— ферменты, содержащиеся в слюне в достаточном количестве;

— кислая среда желудка;

— местный иммунитет лимфатических узлов кишечника.

В силу несовершенства анатомических структур в детском возрасте повышается вероятность попадания возбудителя в организм целым и невредимым. Ослабленный иммунитет у взрослых детей также может вызвать активизацию глистов.

Нарушая всасывание питательных компонентов в ЖКТ, гельминты тем самым обеспечивают себя пищей. Признаки глистов у ребенка в это время проявляются тем, что пропадает аппетит, либо наоборот, возникает постоянное чувство голода. Среди таких детей много не набирающих в весе. Могут наблюдаться тошнота и рвота.

Некоторые источники, упоминая симптомы заболевания, отмечают в качестве одного из них неприятный запах изо рта. Комаровский опровергает это миф, настаивая на исключительном поражении носоглотки и зубов в таком случае.

Свою активность самки глистов проявляют во время ночного сна ребенка. Выползая наружу, они откладывают яйца возле ануса. Клейкое вещество, прикрепляющее молодое потомство к коже, вызывает зуд и беспокойство у спящего малыша. Невыспавшийся ребенок становится капризным и вялым. У него снижается двигательная активность, пропадает интерес ко всему новому и увлекательному. Комаровский уверен, что при наличии зуда в анальной области у детей, в 99 процентов случаев говорят об энтеробиозе.

При осмотре перианальной области можно определить множественные расчесы. У девочек, ввиду близкого расположения наружных половых органов с анусом, часто возникают воспаления слизистой влагалища и окружающих тканей.

Интоксикация часто провоцирует стойкое повышение температуры тела до субфебрильных цифр.

Еще одним характерным признаком глистов являются схваткообразные боли в животе. Это явление связано с действием токсинов паразитов, проникающих в кровь. Их яды нарушают моторику пищеварительной системы. Запоры чередуются с поносами. Хотя Комаровский не относит боли к специфическим симптомам гельминтозов.

В осложненных случаях глисты могут спровоцировать кишечную непроходимость. Плотно закупорив просвет кишки, клубок паразитов может стать поводом для хирургической операции.

Нарушая проходимость желчных путей, нематоды препятствуют желчеотделению, нарушая тем самым нормальное пищеварение. Ряд нутриентов, попадающих с пищей, вовсе не усваиваются в организме ребенка. Нерасщепленные жиры придают калу жирный блеск, в нем присутствуют непереваренные остатки пищи. Имитируя клиническую картину гепатита и механической желтухи, паразиты провоцируют попадание детей в инфекционный стационар.

Без всяких приспособлений в кале можно обнаружить подвижных мелких до 1 см червей. Это острицы, возбудители энтеробиоза. Они имеют характерный белый или сероватый оттенок, один конец их острый, а противоположный – закруглен. Именно обнаружение в детском горшке некого червя Комаровский относит к неоспоримым признакам гельминтозов.

Нарушая всасывание всех микроэлементов в ЖКТ, глисты препятствуют усвоению железа. В запущенных случаях у детей возможно развитие анемии.

Выделенные гельминтами токсины в процессе их жизнедеятельности попадают в сосуды и разносятся с кровью повсюду. При этом аллергические реакции проявляются в виде периодической мелкой сыпи на стопах и кистях. Красные пятна могут трансформироваться в безболезненные водянистые пузырьки.

В поисках кислорода глисты могут мигрировать в воздухоносные пути, вызывая тем самым приступы сухого кашля. По этой же причине паразиты проникают в мышечную ткань. Это обусловливает мышечные боли и общую слабость у детей старшего возраста.

На фоне сниженного иммунитета при глистной инвазии простудные заболевания приобретают длительное и осложненное течение.

Угнетая иммунную функцию, глисты способствуют снижению выработки необходимых антител при вакцинации. Прививки от кори и дифтерии у детей, имеющих симптомы паразитоза, часто переносятся с осложнениями и побочными реакциями.

Что касается пробы Манту, то глистные инвазии часто обусловливают ложноположительные результаты туберкулиновой диагностики.

Несмотря на широкую распространенность гельминтозов их многоликая клиника создает некие сложности в обнаружении паразитов. Не стоит заниматься самодиагностикой. Заподозрить заболевание, опираясь на перечисленные выше симптомы мало. Чтобы назначить специфическое лечение, нужно определить вид паразита. Сделать это без грамотного доктора сложно. Поэтому при первых проявлениях гельминтов в организме следует посетить доктора. Только так можно избежать тяжелых последствий для здоровья ребенка и его окружения.

Некоторые считают дифтерию проблемой из прошлого, болезнью-рудиментом, с которой повсеместно удалось успешно справиться. Но расслабляться еще рано. До сих пор регистрируются случаи этого заболевания, среди детей и взрослых циркулируют бактерии дифтерии. Поэтому о том, когда и какие анализы нужно сдавать на дифтерию, должен знать каждый.

Характеристика заболевания и особенности диагностики дифтерии

Дифтерия — это инфекционная болезнь, которой можно заразиться только от человека. Однако опасным может быть не только заболевший, но и носитель токсигенного (то есть производящего токсины) штамма. Такое носительство протекает без каких-либо признаков, и его можно обнаружить только с помощью лабораторного обследования.

Бактерии дифтерии — бациллы Леффлера — могут передаваться по воздуху с мельчайшими частичками влаги или пыли. Также бактерии могут передаваться при контакте с зараженными предметами обихода и изредка через зараженную еду.

При контакте с заболевшим или с носителем токсичного штамма вероятность заболеть примерно 15–20% [1] . Первые симптомы появляются через 2–10 дней. Повышается температура до 38–39°С, появляется боль в горле, становится сложно глотать. Признаки дифтерии сходны с ангиной, но при этом возникают и специфические симптомы.

Главная отличительная особенность — это тип поражения миндалин. На них образуется налет в виде плотных пленок. Свежие пленки снимаются достаточно легко, но они быстро утолщаются и становятся плотными. Если такую пленку с силой снять с миндалины, то под ней чаще всего образуется кровоточащая эрозия.

Такая типичная клиническая картина с высокой температурой, выраженной интоксикацией, ознобами, головной болью и бледностью кожи развивается у непривитых и имеющих слабый противодифтерийный иммунитет людей. При более высоком уровне иммунитета вместо пленок может образовываться рыхлый налет, а само заболевание протекает менее остро. Поэтому атипичные формы дифтерии легко можно спутать с обычной ангиной [2] .

Однако дифтерия страшна не только сама по себе, но и своими осложнениями.

Среди них выделяют:

инфекционно-токсический шок;
миокардит — поражение сердечной мышцы;
полинейропатию — поражение периферических нервов;
нефрозы — дистрофические процессы в почках;
ДВС-синдром — нарушение свертываемости крови;
круп — осложненное стенозом гортани воспаление дыхательных путей [3] .

Еще в середине XX века дифтерия была распространенной проблемой, вызывавшей осложнения, связанные с риском для жизни, у каждого пятого взрослого пациента и у каждого десятого заболевшего ребенка [4] .

В 1955 году в СССР было официально зарегистрировано около 321 000 случаев дифтерии [5] . В 2015 году, 60 лет спустя, на всей территории России было зарегистрировано только 2 заболевших [6] . То есть заболеваемость снизилась практически в 160 000 раз.

Так как в России регистрируются только единичные случаи дифтерии, далеко не все молодые врачи за свою практику сталкивались с этим заболеванием. Тем более что она может протекать в стертой или бессимптомной форме, маскируясь под ангину и менее опасные заболевания. Поэтому своевременная лабораторная диагностика играет значительную роль в выявлении этого заболевания.

Кроме обследования пациентов с подозрением на дифтерию проводится регулярный серомониторинг — определение уровня иммунитета среди группы населения. Например, среди детей 3–4 лет, 16–17 лет и взрослых. Это помогает оценить коллективный иммунитет, вероятность возникновения вспышек и распространения заболевания [7] .

Для диагностики дифтерии используются несколько методов — бактериологический, серологический и ПЦР-анализ, а также клинический анализ крови.

Основным методом, который позволяет установить диагноз, является микробиологическая диагностика дифтерии. Ее проводят при ангине с характерным выпотом на миндалинах, при подозрении на инфекционный мононуклеоз, паратонзиллярный абсцесс или ларинготрахеит. Это позволяет на самом раннем этапе исключить дифтерию.

С профилактической целью бактериологическое исследование проводят для поступающих на лечение или на работу в психоневрологические стационары, противотуберкулезные учреждения, дома ребенка. Такое обследование проводится, чтобы предотвратить вспышки инфекции в закрытом учреждении [9] .

Для проведения бактериологического исследования с пораженной поверхности забирают мазок и помещают его в транспортную питательную среду. Примерно через 5–7 дней из лаборатории приходит ответ, есть ли в биоматериале рост дифтерийной палочки и обнаружены ли у нее токсигенные свойства. В норме роста быть не должно. Если в результатах исследования указан нетоксигенный штамм, это тоже в большинстве случаев не страшно. Достаточно провести профилактику по назначенной врачом схеме. А вот если выявлен токсигенный штамм, придется пройти полный курс лечения и обследовать всех контактировавших с пациентом лиц.

Как дополнение к бактериологическому методу могут использовать ПЦР-диагностику . Показания к ее проведению те же, что и для бактериологического метода. Но для установления диагноза она уже не является обязательной. Материал для ПЦР-исследования забирают из очага поражения и помещают в специальную среду. В лаборатории выделяют гены дифтерийной бактерии, в том числе отвечающие за ее токсичность. Интерпретируют результат так же, как и при бактериологическом методе: в лучшем случае следы присутствия бактерии не должны обнаружить. Если же выявлен токсигенный штамм, придется срочно проходить лечение.

Еще один вспомогательный метод — клинический анализ крови. С его помощью нельзя отличить, например, дифтерию от ангины, но можно сказать, что воспаление вызвано бактериальной инфекцией. Для проведения этого анализа также берут кровь из вены. Этот анализ занимает всего 1–2 рабочих дня. При бактериальной инфекции повышается уровень СОЭ, количество лейкоцитов и нейтрофилов.

Анализы на дифтерию можно сдать как в государственных клиниках, так и в частных лабораториях. Анализ крови можно сдать в любой лаборатории и, чаще всего, для этого даже не нужно будет направление врача. А вот специфические анализы на дифтерию проводят уже не все, поэтому лучше заранее уточнить этот момент.

Забор материала лучше сдавать в клинике с собственной лабораторией, особенно это касается бактериологического и ПЦР-исследования. Результаты этих анализов во многом зависят от того, насколько точно соблюдали правила забора мазков, хранения и транспортировки материала. При нарушении на любом из этих этапов можно получить ложный отрицательный результат.

В государственном учреждении по направлению все эти исследования можно пройти бесплатно. В частной лаборатории придется заплатить как за само исследование, так и за взятие биоматериала. Но и уровень сервиса при этом обычно выше. Например, некоторые лаборатории высылают результаты исследований на электронный адрес или публикуют их в личном электронном кабинете пациента, так что возвращаться за бланками уже не нужно. Их можно распечатать самостоятельно в любой момент.

Читайте также: